جلد 12، شماره 2 - ( (پاییز و زمستان) 1404 )
سال1404، جلد12 شماره 2 صفحات 199-171 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Zeilabpour R, Moradi A, Balouchi H, Yadavi A, Latifmanesh H. (2026). Mepiquat Chloride (Pix) Improves Germination and Biochemical Stability of Sesame (Sesamum indicum cv. Darab-1) Seeds under Deterioration. Iranian J. Seed Res.. 12(2), 171-199.
URL: http://yujs.yu.ac.ir/jisr/article-1-666-fa.html
URL: http://yujs.yu.ac.ir/jisr/article-1-666-fa.html
زیلابپور رامین، مرادی علی، بلوچی حمیدرضا، یدوی علیرضا، لطیف منش حجت اله.(1404). اثر بهبوددهنده مپیکوات کلراید (پیکس) بر جوانهزنی و پایداری بیوشیمیایی بذرکنجد (Sesamum indicum) رقم داراب ۱ در شرایط زوال پژوهشهای بذر ایران 12 (2) :199-171
دانشگاه یاسوج ، amoradi@yu.ac.ir
چکیده: (76 مشاهده)
هدف: پیری بذر در دانههای روغنی مانند کنجد، یکی از چالشهای اصلی انبارداری است که کیفیت جوانهزنی و قدرت رویشی را کاهش میدهد. رقم داراب‑۱ با روغن بالا، به شرایط انبار (دما، رطوبت و زمان) بسیار حساس است. در این پژوهش، اثر غلظتهای مختلف پیکس در تعامل با دما، رطوبت و مدت نگهداری بر شاخصهای جوانهزنی و بیوشیمیایی بذر بررسی شد تا امکان بهبود پایداری کیفی بذر در انبار مشخص گردد.
روش پژوهش: آزمایش به صورت فاکتوریل چهارعاملی در قالب طرح کاملاً تصادفی با سه تکرار انجام شد. عوامل مورد بررسی عبارت بودند از دمای انبار (۱۵، ۲۵ و ۳۵ درجه سلسیوس)، رطوبت بذر (۹، ۱۲ و ۱۵ درصد)، غلظت پیکس (۰، ۳۰۰۰ و ۴۵۰۰ میلیگرم در لیتر) و مدت زمان نگهداری (۳۰، ۶۰، ۹۰، ۱۲۰، ۱۵۰ و ۱۸۰ روز). پس از پایان دوره انبارداری، ویژگیهای فیزیولوژیکی بذر شامل درصد و سرعت جوانهزنی، طول ریشه و ساقهچه، وزن خشک نهال، شاخص بنیه گیاهچه، فعالیت آنزیم α-آمیلاز و میزان نشت الکترولیت اندازهگیری شد.
یافتهها: افزایش دما، رطوبت و مدت نگهداری، زوال بذر را تسریع کرد. پس از ۱۸۰ روز، نشت الکترولیت در شاهد با افزایش دما از ۱۵ به ۲۵ درجه سلسیوس (در رطوبت ۹ درصد) از 47/21 به 72/72 درصد افزایش یافت (۵۴ درصد نشت غشایی)، در حالی که پیکس ۳۰۰۰ میلیگرم بر لیتر آن را ۱۹‑۸۰ درصد کاهش داد. فعالیت α‑آمیلاز با زوال کاهش یافت، اما پیکس ۳۰۰۰ میلیگرم بر لیتر بالاترین فعالیت را حفظ کرد (5/15 در برابر 3/16 nmol seed-1min-1 پس از ۱۸۰ روز). همچنین درصد و سرعت جوانهزنی، طول و وزن خشک گیاهچه و شاخص بنیه با پیری افت کردند، اما تیمار پیکس، بهویژه در غلظت ۳۰۰۰ میلیگرم بر لیتر ، این کاهشها را بهطور معنیداری تعدیل نمود.
نتیجهگیری: نگهداری بذر در دما و رطوبت بالا، زوال کنجد را تسریع کرده و موجب کاهش جوانهزنی و فعالیت α‑آمیلاز و افزایش آسیب غشایی شد. پیکس ۳۰۰۰ میلیگرم بر لیتر مؤثرترین تیمار بود که بنیه بذر و فعالیت آنزیمی را حفظ و نشت الکترولیت را کاهش داد. بنابراین، تیمار بذر با ۳۰۰۰ میلیگرم بر لیتر پیکس پیش از انبار، بهویژه در شرایط ۱۵ درجه سلسیوس و رطوبت ۹ درصد، بهعنوان راهکاری مؤثر برای افزایش طول عمر و حفظ کیفیت بذر در ذخیرهسازی میانمدت قابل توصیه است.
جنبههای نوآوری:
روش پژوهش: آزمایش به صورت فاکتوریل چهارعاملی در قالب طرح کاملاً تصادفی با سه تکرار انجام شد. عوامل مورد بررسی عبارت بودند از دمای انبار (۱۵، ۲۵ و ۳۵ درجه سلسیوس)، رطوبت بذر (۹، ۱۲ و ۱۵ درصد)، غلظت پیکس (۰، ۳۰۰۰ و ۴۵۰۰ میلیگرم در لیتر) و مدت زمان نگهداری (۳۰، ۶۰، ۹۰، ۱۲۰، ۱۵۰ و ۱۸۰ روز). پس از پایان دوره انبارداری، ویژگیهای فیزیولوژیکی بذر شامل درصد و سرعت جوانهزنی، طول ریشه و ساقهچه، وزن خشک نهال، شاخص بنیه گیاهچه، فعالیت آنزیم α-آمیلاز و میزان نشت الکترولیت اندازهگیری شد.
یافتهها: افزایش دما، رطوبت و مدت نگهداری، زوال بذر را تسریع کرد. پس از ۱۸۰ روز، نشت الکترولیت در شاهد با افزایش دما از ۱۵ به ۲۵ درجه سلسیوس (در رطوبت ۹ درصد) از 47/21 به 72/72 درصد افزایش یافت (۵۴ درصد نشت غشایی)، در حالی که پیکس ۳۰۰۰ میلیگرم بر لیتر آن را ۱۹‑۸۰ درصد کاهش داد. فعالیت α‑آمیلاز با زوال کاهش یافت، اما پیکس ۳۰۰۰ میلیگرم بر لیتر بالاترین فعالیت را حفظ کرد (5/15 در برابر 3/16 nmol seed-1min-1 پس از ۱۸۰ روز). همچنین درصد و سرعت جوانهزنی، طول و وزن خشک گیاهچه و شاخص بنیه با پیری افت کردند، اما تیمار پیکس، بهویژه در غلظت ۳۰۰۰ میلیگرم بر لیتر ، این کاهشها را بهطور معنیداری تعدیل نمود.
نتیجهگیری: نگهداری بذر در دما و رطوبت بالا، زوال کنجد را تسریع کرده و موجب کاهش جوانهزنی و فعالیت α‑آمیلاز و افزایش آسیب غشایی شد. پیکس ۳۰۰۰ میلیگرم بر لیتر مؤثرترین تیمار بود که بنیه بذر و فعالیت آنزیمی را حفظ و نشت الکترولیت را کاهش داد. بنابراین، تیمار بذر با ۳۰۰۰ میلیگرم بر لیتر پیکس پیش از انبار، بهویژه در شرایط ۱۵ درجه سلسیوس و رطوبت ۹ درصد، بهعنوان راهکاری مؤثر برای افزایش طول عمر و حفظ کیفیت بذر در ذخیرهسازی میانمدت قابل توصیه است.
جنبههای نوآوری:
- پیکس ۳۰۰۰ میلیگرم بر لیتر بهطور مؤثری از کاهش صفات فیزیولوژیکی بذر کنجد در طول ذخیرهسازی جلوگیری کرده و پتانسیل جوانهزنی و قدرت بذر را حفظ نمود.
- افزایش دما، رطوبت و مدت نگهداری، فعالیت α‑آمیلاز را کاهش و نشت الکترولیت را افزایش داد که نشاندهنده تسریع پیری فیزیولوژیکی بذر است.
- تیمار با پیکس کیفیت بذر را در شرایط گرم و مرطوب از طریق کاهش نشت الکترولیت و افزایش پایداری غشا بهبود بخشید، که میتواند بهعنوان راهکاری عملی برای افزایش طول عمر بذر کاربرد داشته باشد.
نوع مطالعه: پژوهشي |
موضوع مقاله:
فیزیولوژی بذر
دریافت: 1404/9/26 | ویرایش نهایی: 1404/11/27 | پذیرش: 1404/12/8 | انتشار الکترونیک: 1404/12/29
دریافت: 1404/9/26 | ویرایش نهایی: 1404/11/27 | پذیرش: 1404/12/8 | انتشار الکترونیک: 1404/12/29
فهرست منابع
1. Abdul-Baki, A., & Anderson, D. (1973). Vigor determination in soybean seed by multiple criteria. Crop Science, 13, 630-633. [DOI:10.2135/cropsci1973.0011183X001300060013x]
2. Adavi, Z. (2025). Enhancing sesame (Sesamum indicum L. cv. Dashtestan) yield and oil quality with integrated phosphorus, Funneliformis mosseae, and humic acid under drought stress. Arid Land Research and Management, 1-16. [DOI:10.1080/15324982.2025.2608762]
3. Afrosheh, R., Balouchi, H., Movahhedi Dehnavi, M., & Gharineh, M. (2018). The effects of salicylic acid and seed deterioration on germination indices and antioxidant enzymes changes of Carthamus tinctorius L. cv. Soffeh seed. Iranian Journal of Seed Science and Technology, 7(1), 53-64. (In Persian) [DOI:10.22034/ijsst.2018.117053]
4. Afshari, F., Golkar, P., & Mohammadinejad, G. (2014). Evaluation of drought tolerance in sesame (Sesamum indicum L.) genotype at different growth stages. Arid Biom Scientific and Research Journal, 4(2), 90-94.
5. Alivand, R. (2010). Investigating seed decay in oilseed plants with different storage conditions. M.Sc. thesis, University of Tehran, Karaj, Iran.
6. Ansari, O., & Sharif Zadeh, F. (2012). Osmo and hydro priming improvement germination characteristics and enzyme activity of Mountain Rye (Secale montanum) seeds under drought stress. Journal of Stress Physiology & Biochemistry, 8(4), 253-261.
7. Ansari, O., Sharif-Zadeh, F., Moradi, A., Azadi, M.S., & Younesi, E. (2013). Heat shock treatment can improve seed germination indices and enzyme activity in primed seeds with gibberellin of mountain rye (Secale montanum) under accelerated aging. Cercetări Agronomice în Moldova, 46(3), 21-30. [DOI:10.2478/v10298-012-0100-z]
8. Baghdadi, G., Azizi, M., Sedaghat, N., Roshan-Sarvestani, V., & Aroei, H. (2017). Effects of storage temperature, atmosphere, and packaging on quality characteristics of Bunium persicum seeds during nine-month storage. Horticultural Sciences Journal, 31(4), 643-657. (In Persian)
9. Baladi, S., Balouchi, H., Moradi, A., & Movahhedi Dehnavi, M. (2016). Effects of different storage temperatures and humidities on flax (Linum usitatissimum L.) seed germination indices. Iranian Seed Science and Technology Journal, 5(1), 107-122. (In Persian)
10. Balouchi, H., Bagheri, F., Kayednezami, R., Movahhedi Dehnavi, M., & Yadavi, A. R. (2014). Effect of seed aging on germination and seedling growth indices in three cultivars of Brassica napus L. Journal of Plant Research (Iranian Journal of Biology), 26(4), 397-411. (In Persian)
11. Bewley, J.D., Bradford, K.J., Hilhorst, H.W., & Nonogaki, H. (2013). Seeds: Physiology of Development, Germination and Dormancy (3rd ed.). Springer. [DOI:10.1007/978-1-4614-4693-4]
12. Boquet, D.J. & Stewart, S. (2005). Suggested guidelines for plant growth regulator use on Louisiana cotton. Louisiana State University Agricultural Center Publication, 2918.
13. Brar, N.S., Kaushik, P., & Dudi, B.S. (2019). Assessment of natural ageing related physio-biochemical changes in onion seed. Agriculture, 9(8), 1-15. [DOI:10.3390/agriculture9080163]
14. Bu, M., Fan, W., Li, R., He, B., & Cui, P. (2023). Lipid metabolism and improvement in oilseed crops: Recent advances in multi-omics studies. Metabolites, 13(12), 1170. [DOI:10.3390/metabo13121170] [PMID] [PMCID]
15. Chauhan, D.S., Deswal, D.P., Dahiya, O.S., & Punia, R.C. (2011). Change in storage enzymes activities in natural and accelerated aged seed of wheat (Triticum aestivum). Indian Journal of Agricultural Sciences, 81(11), 1037-1040.
16. Chiu, K.Y., Chen, C.L., & Sung, J.M. (2003). Effect of priming temperature on storability of primed sh-2 sweet corn seed. Scientia Horticulturae, 98(2), 159-167. [DOI:10.1016/S0304-4238(02)00206-6]
17. Corbineau, F. (2024). The Effects of Storage Conditions on Seed Deterioration and Ageing: How to Improve Seed Longevity. Seeds, 3(1), 56-75. [DOI:10.3390/seeds3010005]
18. Dantas, A.F., Fascineli, M.L., Jose, S.C.B.R., Padua, J.G., Gimenes, M.A., & Grisolia, C.K. (2019). Loss of genetic integrity in artificially aged seed lots of rice and common bean. Mutation Research/Genetic Toxicology and Environmental Mutagenesis, 846, 1-6. [DOI:10.1016/j.mrgentox.2019.07.008] [PMID]
19. Dehghanshoar, M., Hamidi, A., & Mobsar, S. (2005). Seed Germination Test Manual. Agricultural Education Publications, Tehran, Iran. (In Persian)
20. FAO. (2021). The impact of natural hazards and disasters on agriculture and food security and nutrition. Food and Agriculture Organization of the United Nations. https://www.fao.org/faostat/en/
21. Fessel, S.A., Panobianco, M., Souza, C.R. de, & Vieira, R.D. (2010). Teste de condutividade elétrica em sementes de soja armazenadas sob diferentes temperaturas [Electrical conductivity test in soybean seeds stored under different temperatures]. Bragantia, 69(1), 207-214. [DOI:10.1590/S0006-87052010000100026]
22. Fessel, S.A., Vieira, R.D., Cruz, M.C.P., Paula, R.C., & Panobianco, M. (2006). Electrical conductivity testing of corn seeds as influenced by temperature and storage period. Pesquisa Agropecuária Brasileira, 41(10), 1551-1559. [DOI:10.1590/S0100-204X2006001000013]
23. Ghanbari, M., Mohtashami Bidgoli, A., Siehsaran, P., & Pirani, H. (2018). Effect of seed aging on bean germination and enzyme activities under salt stress. Environmental Tensions in Reproductive Sciences, 12(2), 594-585. (In Persian)
24. Ghassemi-Golezani, K., & Hosseinzadeh-Mahootchy, A. (2009). Changes in seed vigor of faba bean (Vicia faba L.) cultivars during development and maturity. Seed Science and Technology, 37, 713-720. [DOI:10.15258/sst.2009.37.3.18]
25. Goel, A., Goel, A.K., & Sheoran, I.S. (2003). Changes in oxidative stress enzymes during artificial aging in cotton (Gossypium hirsutum L.) seeds. Physiologia Plantarum, 160, 1093-1100. [DOI:10.1078/0176-1617-00881] [PMID]
26. Hajiabbasi, M., Tavakkol afshari, R., Abbasi, A. & Kamaei, R. (2021). Effects of salicylic acid and ethylene on the germination and gene expression of alpha and beta amylase in deteriorated soybean seeds (Glycine max). Iranian Journal of Seed Science and Technology, 10(1), 141-156. [DOI:10.22092/ijsst.2019.125038.1257]
27. Hoseinipoor, A., Yadavi, A., Balouchi, H., & Moradi, A. (2020). The effect of water potential and deterioration on some indices of germination and biochemical of linseed (Linum usitatissimum Var. Norman) seed at different temperatures. Iranian Journal of Seed Science and Technology, 9(2), 19-33. (In Persian) [DOI:10.22034/ijsst.2019.123144.1225]
28. Ikić, I., Maričević, M., Tomasović, S., Gunjača, J., Šatović, Z. & Šarčević, H. (2012). The effect of germination temperature on seed dormancy in Croatiangrown winter wheats. Euphytica, 188, 25-34. [DOI:10.1007/s10681-012-0735-8]
29. International Seed Testing Association (ISTA). (2009). International Rules for Seed Testing. International Seed Testing Association.
30. International Seed Testing Association (ISTA). (2024). International Rules for Seed Testing. Wallisellen, Switzerland: International Seed Testing Association.
31. Jorge, M.H.A., & Ray, D.T. (2004). Germination characterization of guayule (Parthenium argentatum) seed by morphology, mass, and X-ray analysis. Industrial Crops and Products, 23, 59-63. [DOI:10.1016/j.indcrop.2004.05.007]
32. Jost, P., Whitaker, J., Steve, M.B., & Bednarz, C. (2006). Use of plant growth regulators as a management tool in cotton. Georgia Cotton Production Guide, 37-39.
33. Kaur, H., Petla, B.P., Kamble, N.U., Singh, A., Rao, V., Salvi, G., & Majee, M. (2015). Differentially expressed seed aging-responsive heat shock protein OsHSP18.2 improves germination and seedling establishment under abiotic stress. Frontiers in Plant Science, 6, 713. [DOI:10.3389/fpls.2015.00713]
34. Kibinza, S., Vinel, D., Côme, D., Bailly, C., & Corbineau, F. (2006). Sunflower seed deterioration as related to moisture content during aging, energy metabolism, and ROS scavenging. Physiologia Plantarum, 128(3), 496-506. [DOI:10.1111/j.1399-3054.2006.00771.x]
35. Latifzadeh Shahkhali, M., Ehtashami, M., & Moradi, F. (2020). Effects of natural and artificial seed deterioration on ROS, antioxidant enzymes, and germination characteristics in local and improved rice cultivars. Iranian Journal of Seed Research, 8(2), 21-40. (In Persian) [DOI:10.52547/yujs.8.2.21]
36. Lee, S. S., & Kim, J. H. (2000). Total sugars, α-amylase activity, and germination after priming of normal and aged rice seeds. Korean Journal of Crop Science, 45(3), 195-199.
37. Lee, Y.P., Baek, K.H., Lee, H.S., Kwak, S.S., Bang, J.W., & Kwon, S.Y. (2010). Tobacco seeds overexpressing Cu/Zn superoxide dismutase and ascorbate peroxidase display enhanced longevity and germination under stress. Journal of Experimental Botany, 61(9), 2499-2506. [DOI:10.1093/jxb/erq085] [PMID] [PMCID]
38. Liu, X., Wang, Y., Du, M., Li, F., Tian, X., & Li, Z. (2025). Mepiquat chloride-driven regulation in cotton in China: A review of physiological mechanisms, agronomic integration, and future trajectories. Journal of Cotton Research, 8, 42. [DOI:10.1186/s42397-025-00243-z]
39. McDonald, M.B. (1999). Seed deterioration: Physiology, repair, and assessment. Seed Science and Technology, 27(1), 177-237.
40. Mehrabi Kooshki, M., Moradi, A., Balouchi, H., Behboud, R., & Latifmanesh, H. (2022). Germination and viability coefficients of faba bean (Vicia faba) seed under different storage conditions. Iranian Journal of Seed Research, 9(1), 1-24. (In Persian) http://dx.doi.org/10.52547/yujs.9.1.1 [DOI:10.52547/yujs.9.1.1]
41. Mohammadi, H., Soltani, A., Sadeghipour, H.R., & Zeinali, H. (2012). Effects of seed aging on reserve utilization and seedling growth in soybean. International Journal of Plant Production, 5(1), 65-70. [DOI:10.22069/ijpp.2012.720]
42. Mosavi Nik, S. M., Gholami Tilebeni, H., Kord Firouz Jae, G. H., Sadeghi, M., & Sedighi, E. (2011). Free fatty acid and electrical conductivity changes in cotton seed (Gossypium hirsutum) under seed deteriorating conditions. International Journal of AgriScience, 1(2), 62-66.
43. Muhammad, I., Khezir, H., & Noor, I. (2007). Cotton response to mepiquat chloride and nitrogen under ultra-narrow plant spacing. Asian Journal of Plant Sciences, 6(1), 87-92. [DOI:10.3923/ajps.2007.87.92]
44. Nadarajan, J., Walters, C., Pritchard, H. W., Ballesteros, D., & Colville, L. (2023). Seed Longevity-The Evolution of Knowledge and a Conceptual Framework. Plants, 12(3), 471. [DOI:10.3390/plants12030471] [PMID] [PMCID]
45. Niakan, M., Habibi, A., & Goorbanli, M. (2012). Effect of Pix on germination, growth, carbohydrates and antioxidant enzymes in cotton seed. Iranian Journal of Plant Physiology, 1(4), 301-307. (In Persian)
46. Organization for Economic Co-operation and Development (OECD), & Food and Agriculture Organization (FAO). (2023). OECD-FAO Agricultural Outlook 2023-2032: Oilseeds and Oilseed Products. OECD Publishing
47. Pathak, K., Rahman, S.W., Bhagawati, S., & Gogoi, B. (2017). Sesame (Sesamum indicum L.), an underexploited oil seed crop: current status, features and importance - A review. Agricultural Reviews, 38(3), 223-227. [DOI:10.18805/ag.v38i03.8982]
48. Pirredda, M., Fañanás-Pueyo, I., Oñate-Sánchez, L., & Mira, S. (2024). Seed longevity and ageing: a review on physiological and genetic factors with an emphasis on hormonal regulation. Plants, 13(1), 41. [DOI:10.3390/plants13010041] [PMID] [PMCID]
49. Polat, T., Özer, H., Öztürk, E., & Sefaoğlu, F. (2017). Effects of mepiquat chloride applications on non-oilseed sunflower. Turkish Journal of Agriculture and Forestry, 41(6), 472-479. [DOI:10.3906/tar-1705-77]
50. Pradidwan, P. (2004). Vigor loss and physiological changes in aged seeds. Seed Technology Bulletin, 19(2), 35-40.
51. Qian, Q., Wang, N., Ruan, S., Noor, M., Zhang, H., Shi, J., Dong, Q., Xu, Q., Song, M., Yan, G., Zhang, X., & Wang, X. (2023). Mepiquat chloride priming confers the ability of cotton seed to tolerate salt by promoting ABA-operated GABA signaling control of the ascorbate-glutathione cycle. Journal of Cotton Research, 6, 24. [DOI:10.1186/s42397-023-00162-x]
52. Rao, R.G., Singh, S.P.M., & Rai, M. (2006). Storability of onion seeds and effects of packaging and storage conditions on viability and vigor. Scientia Horticulturae, 110(1), 1-6. [DOI:10.1016/j.scienta.2006.06.002]
53. Reddy, V.R., Hodges, H.F., & Baker, D.N. (1990). Temperature and mepiquat chloride effects on cotton canopy architecture. Agronomy Journal, 82, 190-195. [DOI:10.2134/agronj1990.00021962008200020004x]
54. Sepaskhah, A.R., & Andam, M. (2001). Crop coefficient of sesame in a semi-arid region of I.R. Iran. Agricultural Water Management, 49(1), 51-63. [DOI:10.1016/S0378-3774(00)00122-0]
55. Siadat, S.A., Moosavi, A., & Sharafi Zadeh, M. (2012). Effect of seed priming on antioxidant activity and germination characteristics of maize under different aging treatments. Research Journal of Seed Science, 5(2), 51-62. [DOI:10.3923/rjss.2012.51.62]
56. Solberg, S. Ø., Yndgaard, F., Andreasen, C., von Bothmer, R., Loskutov, I. G., & Asdal, Å. (2020). Long-term storage and longevity of orthodox seeds: A systematic review. Frontiers in Plant Science, 11, 1007. [DOI:10.3389/fpls.2020.01007] [PMID] [PMCID]
57. Stapleton, G.S. (2004). Pentia™ Plant Growth Regulator: Research to Demonstration to Farm. Proceedings of the Beltwide Cotton Conferences, San Antonio, Texas, USA
58. Tabatabaei, M. (2013). The effect of seed aging on germination behavior and seedling growth in cumin. M.Sc. thesis, Shahid Bahonar University of Kerman. (In Persian)
59. Thandapani, V., & Subharayalu, M. (2000). Effect of pre-sowing seed treatment with chemicals and growth regulators on drought tolerance and yield of cotton under rainfed condition. Madras Agricultural Journal, 73(12), 668-675. [DOI:10.29321/MAJ.10.A02328]
60. Verma, S.S., Verma, U., & Tomar, R.P.S. (2003). Studies on seed quality parameters in deteriorating seeds of Brassica campestris. Seed Science and Technology, 31, 389-396. [DOI:10.15258/sst.2003.31.2.15]
61. Vieira, R.D., Neto, S.A., de Bittencourt, S.R.M., & Panobianco, M. (2004). Electrical conductivity of the seed soaking solution and soybean seedling emergence. Scientia Agricola, 61, 164-168. [DOI:10.1590/S0103-90162004000200007]
62. Walters, C. (2015). Orthodoxy, recalcitrance and in-between: Describing variation in seed storage characteristics using threshold responses to water loss. Planta, 242, 397-406. [DOI:10.1007/s00425-015-2312-6] [PMID] [PMCID]
63. Wang, N., Wang, X., Zhang, H., Liu, X., Shi, J., Dong, Q., Xu, Q., Gui, H., Song, M., Yan, G., & Zhang, X. (2021). Early ABA-stimulated maintenance of Cl⁻ homeostasis by mepiquat chloride priming confers salt tolerance in cotton seeds. The Crop Journal, 9(2), 387-399. [DOI:10.1016/j.cj.2020.08.004]
64. Xia, F., Chen, L., Sun, Y., & Mao, P. (2015). Relationships between embryo ultrastructure and biochemical variations during ageing of oat seeds. Acta Physiologiae Plantarum, 37(4), 88. [DOI:10.1007/s11738-015-1825-8]
65. Xiao, Z., Storms, R., & Tsang, A. (2006). A quantitative starch-iodine method for measuring alpha-amylase and glucoamylase activities. Analytical Biochemistry, 351(1), 146-148. [DOI:10.1016/j.ab.2006.01.036] [PMID]
66. Yin, G., Xin, X., Song, C., Chen, X., Zhang, J., Wu, S., Li, R., Liu, X., & Lu, X. (2014). Activity levels and expression of antioxidant enzymes in the ascorbate-glutathione cycle in artificially aged rice seed. Plant Physiology and Biochemistry, 80, 1-9. [DOI:10.1016/j.plaphy.2014.03.006] [PMID]
67. Zamani, A., Nouri, S.A.S., Afshari, R.T., Nezhad, H.I., Akbari, G.A., & Tavakoli, A. (2010). Lipid peroxidation and antioxidant enzymes activity under natural and accelerated aging in safflower (Carthamus tinctorius L.) seeds. Iranian Journal of Field Crop Science, 41(3), 545-554. (In Persian)
68. Zhang, H., Miao, H., Wang, L., Qu, L., Liu, H., Wang, Q., Yue, M., & Zhang, X. (2013). Genome sequencing of the important oilseed crop Sesamum indicum L. Genome Biology, 14, 401. [DOI:10.1186/gb-2013-14-1-401] [PMID] [PMCID]
69. Zhang, K., Zhang, Y., Sun, J., Meng, J., & Tao, J. (2021). Deterioration of orthodox seeds during ageing: Influencing factors, physiological alterations and the role of reactive oxygen species. Plant Physiology and Biochemistry, 158, 475-485. [DOI:10.1016/j.plaphy.2020.11.031] [PMID]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
کلیه حقوق این وب سایت متعلق به مجله پژوهشهای بذر ایران می باشد.
طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق
© 2026 CC BY-NC 4.0 | Iranian Journal of Seed Research
Designed & Developed by : Yektaweb
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.