جلد 12، شماره 2 - ( (پاییز و زمستان) 1404 )
سال1404، جلد12 شماره 2 صفحات 132-111 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Molazem D. (2026). Electromagnetic Priming: A Novel Strategy to Enhance Drought Tolerance in Seeds and Seedlings of Rice (Oryza sativa cv. Hashemi). Iranian J. Seed Res.. 12(2), 111-132.
URL: http://yujs.yu.ac.ir/jisr/article-1-655-fa.html
URL: http://yujs.yu.ac.ir/jisr/article-1-655-fa.html
ملازم داور.(1404). پیشتیمار الکترومغناطیسی: راهبردی نوین برای افزایش تحمل به خشکی در بذر و گیاهچه برنج (Oryza sativa cv. Hashemi) پژوهشهای بذر ایران 12 (2) :132-111
دانشگاه آزاد اسلامی واحد آستارا ، davar.molazem@iau.ac.ir
چکیده: (43 مشاهده)
هدف: این مطالعه تأثیر پیشتیمار مغناطیسی را در بهبود تحمل به خشکی برنج رقم هاشمی در مرحله جوانهزنی و رشد اولیه گیاهچه بررسی کرد.
روش پژوهش: آزمایشی فاکتوریل بر پایه طرح کاملاً تصادفی با سه تکرار در سال ۱۴۰۳ در دانشگاه آزاد اسلامی واحد آستارا اجرا شد. بذرهای برنج در معرض میدانهای مغناطیسی (۰، ۵۰، ۱۰۰ و ۱۵۰ میلیتسلا) به مدت ۲۰ یا ۴۰ دقیقه قرار گرفتند و سپس تحت چهار سطح تنش خشکی القاشده با پلیاتیلن گلیکول (۰،2-، 5-، و ۱۰- بار) قرار گرفتند. شاخصهای جوانهزنی و صفات فیزیولوژیکی شامل پرولین، مالوندیآلدئید و کلروفیل پس از ۲۵ روز اندازهگیری شدند.
یافتهها: مقایسه میانگین برهمکنشها نشان داد که در نبود میدان الکترومغناطیسی، افزایش تنش خشکی از ۰ تا ۱۰- بار بهطور معنیداری درصد جوانهزنی را از ۹۷ به ۶۶/۵۳ درصد، سرعت جوانهزنی را از 43/0 به 19/0 بذر در روز و طول ریشهچه از 8/65 به 66/28، طول ساقهچه از 33/45 به 33/17میلیمتر کاهش داد. با این حال، کاربرد میدان مغناطیسی ۱۰۰ میلیتسلا این کاهشها را بهترتیب برای درصد جوانهزنی و طول گیاهچه به حدود ۲۴ و ۴۹ درصد محدود کرد که بیانگر بهبود بیش از ۲۰ درصدی در حفظ توان جوانهزنی است. با افزایش تنش خشکی، محتوای پرولین از 01/1 به 34/8 میکرومول بر گرم وزنتر و مالوندیآلدئید از 40/4 به 00/8 میلیمول بر گرم وزنتر افزایش یافت، در حالیکه کلروفیل a از 64/0 به 17/0 و کلروفیل b از 75/0 به 32/0 میلیگرم بر گرم وزنتر کاهش یافت. در شاهد، کلروفیل a حدود ۷۲ درصد کاهش نشان داد، در حالیکه در شدت ۱۰۰ میلیتسلا این کاهش به 8/56 درصد محدود شد که حاکی از بهبود تقریباً ۱۵ درصدی است. تحلیل رگرسیون نشان داد که اثر شدت میدان مغناطیسی بر صفات مورد بررسی به سطح تنش خشکی وابسته بوده و از الگوی یکنواختی پیروی نمیکند؛ بهطوریکه در تنش شدید (۱۰- بار)، هیچ رابطه خطی معنیداری مشاهده نشد.
نتیجهگیری: کاربرد پیشتیمار مغناطیسی در محدوده بهینه میتواند بهعنوان روشی ساده، زیستسازگار و کاربردی برای افزایش تحمل به خشکی در بذر برنج و بهبود استقرار اولیه گیاهچه در شرایط نامساعد محیطی بهکار رود. در پژوهش حاضر، تیمار ۱۰۰ میلیتسلا به مدت ۴۰ دقیقه باعث بهبود شاخصهای بنیه گیاهچه از نظر طول و وزن شد. این یافتهها افقهای تازهای را برای کاربرد فناوریهای فیزیکی در مدیریت تنشهای کشاورزی گشوده و زمینه را برای تحقیقات بیشتر در شرایط مزرعهای فراهم میسازد.
جنبههای نوآوری
روش پژوهش: آزمایشی فاکتوریل بر پایه طرح کاملاً تصادفی با سه تکرار در سال ۱۴۰۳ در دانشگاه آزاد اسلامی واحد آستارا اجرا شد. بذرهای برنج در معرض میدانهای مغناطیسی (۰، ۵۰، ۱۰۰ و ۱۵۰ میلیتسلا) به مدت ۲۰ یا ۴۰ دقیقه قرار گرفتند و سپس تحت چهار سطح تنش خشکی القاشده با پلیاتیلن گلیکول (۰،2-، 5-، و ۱۰- بار) قرار گرفتند. شاخصهای جوانهزنی و صفات فیزیولوژیکی شامل پرولین، مالوندیآلدئید و کلروفیل پس از ۲۵ روز اندازهگیری شدند.
یافتهها: مقایسه میانگین برهمکنشها نشان داد که در نبود میدان الکترومغناطیسی، افزایش تنش خشکی از ۰ تا ۱۰- بار بهطور معنیداری درصد جوانهزنی را از ۹۷ به ۶۶/۵۳ درصد، سرعت جوانهزنی را از 43/0 به 19/0 بذر در روز و طول ریشهچه از 8/65 به 66/28، طول ساقهچه از 33/45 به 33/17میلیمتر کاهش داد. با این حال، کاربرد میدان مغناطیسی ۱۰۰ میلیتسلا این کاهشها را بهترتیب برای درصد جوانهزنی و طول گیاهچه به حدود ۲۴ و ۴۹ درصد محدود کرد که بیانگر بهبود بیش از ۲۰ درصدی در حفظ توان جوانهزنی است. با افزایش تنش خشکی، محتوای پرولین از 01/1 به 34/8 میکرومول بر گرم وزنتر و مالوندیآلدئید از 40/4 به 00/8 میلیمول بر گرم وزنتر افزایش یافت، در حالیکه کلروفیل a از 64/0 به 17/0 و کلروفیل b از 75/0 به 32/0 میلیگرم بر گرم وزنتر کاهش یافت. در شاهد، کلروفیل a حدود ۷۲ درصد کاهش نشان داد، در حالیکه در شدت ۱۰۰ میلیتسلا این کاهش به 8/56 درصد محدود شد که حاکی از بهبود تقریباً ۱۵ درصدی است. تحلیل رگرسیون نشان داد که اثر شدت میدان مغناطیسی بر صفات مورد بررسی به سطح تنش خشکی وابسته بوده و از الگوی یکنواختی پیروی نمیکند؛ بهطوریکه در تنش شدید (۱۰- بار)، هیچ رابطه خطی معنیداری مشاهده نشد.
نتیجهگیری: کاربرد پیشتیمار مغناطیسی در محدوده بهینه میتواند بهعنوان روشی ساده، زیستسازگار و کاربردی برای افزایش تحمل به خشکی در بذر برنج و بهبود استقرار اولیه گیاهچه در شرایط نامساعد محیطی بهکار رود. در پژوهش حاضر، تیمار ۱۰۰ میلیتسلا به مدت ۴۰ دقیقه باعث بهبود شاخصهای بنیه گیاهچه از نظر طول و وزن شد. این یافتهها افقهای تازهای را برای کاربرد فناوریهای فیزیکی در مدیریت تنشهای کشاورزی گشوده و زمینه را برای تحقیقات بیشتر در شرایط مزرعهای فراهم میسازد.
جنبههای نوآوری
- پاسخ جوانهزنی به میدانهای مغناطیسی غیرخطی بوده و به شدت میدان و سطح تنش خشکی وابسته است.
- پیشتیمار مغناطیسی با شدت ۱۰۰ میلیتسلا به مدت ۴۰ دقیقه، اثرات تنش خشکی را تا ۲۰ درصد در صفات جوانهزنی کاهش میدهد.
- پیشتیمار مغناطیسی راهبردی ساده و زیستسازگار برای بهبود استقرار گیاهچه برنج در شرایط خشکی ارائه میدهد.
نوع مطالعه: پژوهشي |
موضوع مقاله:
فیزیولوژی بذر
دریافت: 1404/8/13 | ویرایش نهایی: 1404/12/5 | پذیرش: 1404/12/8 | انتشار الکترونیک: 1404/12/29
دریافت: 1404/8/13 | ویرایش نهایی: 1404/12/5 | پذیرش: 1404/12/8 | انتشار الکترونیک: 1404/12/29
فهرست منابع
1. Abdul-baki, A. A., & Anderson, J. D. (1973). Vigor determination in soybean seed by multiplication. Crop Science, 13, 630-633. [DOI:10.2135/cropsci1973.0011183X001300060013x]
2. Afzal, I., Saleem, S., Skalicky, M., Javed, T., Bakhtavar, M. A., ul Haq, Z., Kamran, M., Shahid, M., Sohail Saddiq, M., Afzal, A., Shafqat, N., Dessoky, E. S., Gupta, A., Korczyk-Szabo, J., Brestic, M., & E. L. Sabagh, A. (2021). Magnetic field treatments improves sunflower yield by inducing physiological and biochemical modulations in seeds. Molecules, 26(7), 1-14. [DOI:10.3390/molecules26072022] [PMID] [PMCID]
3. Al-Allaf, S. J. A., & Al-Baker, R. A. H. (2022). Effectiveness of magnetic field in stimulation of biochemical and enzymes activities in seedling and callus of Nigella sativa. International Journal of Health Sciences, 6(S2), 3301-3314. [DOI:10.53730/ijhs.v6nS2.5818]
4. Alarcon, J. L. P., Cuesta, J. C., Molejon, M. R. B., Paragsa, J. D., & Ypon, N. M. Q. (2024). Investigating the influence of magnets in the growth of string bean (Phaseolus vulgaris) plant. American Journal of Life Science and Innovation, 3(1), 16-19. [DOI:10.54536/ajlsi.v3i1.2450]
5. Arnon, D. I. (1975). Copper enzymes in isolated chloroplasts; polyphenol-oxidase in Beta vulgaris. Plant Physiology, 24, 1-15. [DOI:10.1104/pp.24.1.1] [PMID] [PMCID]
6. Bandumula, N. (2018). Rice production in Asia: key to global food security. Proceedings of the National Academy of Sciences, India Section B: Biological Sciences, 88, 1323-1328. [DOI:10.1007/s40011-017-0867-7]
7. Bates, I., Waldern, R. P., & Teare, I. D. (1973). Rapid determination of free prolin for water stress studies. Plant and Soil, 39, 205-207. [DOI:10.1007/BF00018060]
8. Belcher, E. W. (1995). The effect of seed condition and length of stratification on the germination of loblolly pine seed. Tree Planters' Notes 46(4), 138-142.
9. Carbonell, M. V., Martinez, E., & Amaya, J. M. (2000). Stimulation of germination in rice (Oryza sativa L.) by a static magnetic field. Electro- and Magnetobiology, 19(1), 121-128. [DOI:10.1081/JBC-100100303]
10. Carbonell, M., Martínez, E., Florez, M., Maqueda, R., Pintor-Lopez, A., & Amaya, J. (2008). Magnetic field treatments improve germination and seedling growth in Festuca arundinacea Schreb. and Lolium perenne L. Seed Science Technology, 36, 31-37. [DOI:10.15258/sst.2008.36.1.03]
11. FAO. (2010). Rice in the global economy: Strategic research and policy issues for food security. https://www.fao.org/agrifood-economics/publications/detail/en/c/123033/
12. FAO. (2022). FAOSTAT online database. Food Agriculture Organization of the United Nations. http://faostat.fao.org/data.
13. Faraz Ali, M., Sajid Aqeel Ahmad, M., Gaafar, A.-R. Z., & Shakoor, A. (2024). Seed pre-treatment with electromagnetic field (EMF) differentially enhances germination kinetics and seedling growth of maize (Zea mays L.). Journal of King Saud University Science, 36(5), 103184. [DOI:https://doi.org/10.1016/j.jksus.2024.103184]
14. Farooq, M. A., Niazi, A. K., Akhtar, J., Saifullah, Farooq, M., Souri, Z., Karimi, N., & Rengel, Z. (2019). Acquiring control: The evolution of ROS-Induced oxidative stress and redox signaling pathways in plant stress responses. Plant Physiology and Biochemistry, 141, 353-369. [DOI:https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2019.04.039] [PMID]
15. Florez, M., Carbonell, M. V., & Martínez, E. (2007). Exposure of maize seeds to stationary magnetic fields: effects on germination and early growth. Environmental and Experimental Botany, 59(1), 68-75. [DOI:10.1016/j.envexpbot.2005.10.006]
16. Ghane, S. G., Lokhande, V. H. & Nikam, T. D. (2012). Differential growth, physiological and biochemical responses of Niger (Guizotia abyssinica Cass.) cultivars to water-deficit (drought) stress. Acta Physiologiae Plantarum, 34(1), 215-225. [DOI:10.1007/s11738-011-0820-y]
17. Hafeez, M. B., Zahra, N., Ahmad, N., Shi, Z., Raza, A., Wang, X., & Li, J. (2023). Growth, physiological, biochemical and molecular changes in plants induced by magnetic fields: A review. Plant Biology, 25(1), 8-23. [DOI:10.1111/plb.13459] [PMID]
18. Hasan, M. M., Alharby, H. F., Uddin, M. N., Ali, M. A., Anwar, Y., Fang, X.-W., Hakeem, K. R., Alzahrani, Y., & Hajar, A. S. (2020). Magnetized water confers drought stress tolerance in Moringa biotype via modulation of growth, gas exchange, lipid peroxidation and antioxidant activity. Polish Journal of Environmental Studies, 29(2), 1625-1636. [DOI:10.15244/pjoes/110347]
19. Heath, R. L., & Packer, I. (1968). Photoperoxidation in isolated chloroplasts. I. Kinetics and stoichiometry of fatty acid peroxidation. Archives of Biochemistry and Biophysics, 125(1), 189-198. [DOI:10.1016/0003-9861(68)90654-1] [PMID]
20. Ibrahim, S., El-Liethy, M. A., Elwakeel, K. Z., Hasan, M. A. E.-G., Al Zanaty, A. M., & Kamel, M. M. (2020). Role of identified bacterial consortium in treatment of quhafa wastewater treatment plant influent in Fayuom, Egypt. Environmental Monitoring and Assessment, 192(3), 161. [DOI:10.1007/s10661-020-8105-9] [PMID]
21. International Seed Testing Association (1976). International rules for seed testing. Seed Science and Technology, 4, 51-177.
22. Janalizadeh M., Nizami, A., Khazaei, H., Faizi, H., & Guldani, M. (2016). Effect of magnetic fields on seed germination and seedling growth of sesame (Sesamum indicum L.). Iranian Journal of Seed Research, 3(1), 1-13. [In Persian] [DOI:10.29252/yujs.3.1.1]
23. Kataria, S., Baghel, L., & Guruprasad, K. N. (2017). Pre-treatment of seeds with static magnetic field improves germination and early growth characteristics under salt stress in maize and soybean. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology, 10, 83-90. [DOI:10.1016/j.bcab.2017.02.010]
24. Katsenios, N., Bilalis, D., Efthimiadou, A., Aivalakis, G., Nikolopoulou, A.-E., Karkanis, A., & Travlos, I. (2016). Role of pulsed electromagnetic field on enzyme activity, germination, plant growth and yield of durum wheat. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology, 6, 152-158. [DOI:10.1016/j.bcab.2016.03.010]
25. Katsenios, N., Christopoulos, M. V., Kakabouki, I., Vlachakis, D., Kavvadias, V., & Efthimiadou, A. (2021). Effect of pulsed electromagnetic field on growth, physiology and postharvest quality of kale (Brassica oleracea), wheat (Triticum durum) and spinach (Spinacia oleracea) microgreens. Agronomy, 11(7), 1364. [DOI:10.3390/agronomy11071364]
26. Kaur, S., Vian, A., Chandel, S., Singh, H. P., Batish, D. R., & Kohli, R. K. (2021). Sensitivity of plants to high frequency electromagnetic radiation: cellular mechanisms and morphological changes. Reviews in Environmental Science and Bio/Technology, 20(1), 55-74. [DOI:10.1007/s11157-020-09563-9]
27. Kumar, A., Singh, M., Singh, P. P., Singh, S. K., Singh, P. K., & Pandey, K. D. (2016). Isolation of plant growth promoting rhizobacteria and their impact on growth and curcumin content in Curcuma longa L. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology, 8, 1-7. [DOI:10.1016/j.bcab.2016.07.002]
28. Ma, Y., Dias, M. C., & Freitas, H. (2020). Drought and salinity stress responses and microbe-induced tolerance in plants. Frontiers in Plant Science, 11, 591911. [DOI:10.3389/fpls.2020.591911] [PMID] [PMCID]
29. Maguire, J. D. (1962). Speed of germination-aid in selection and evaluation for seedling emergence and vigor. Crop Science, 2(2), 176-177. [DOI:10.2135/cropsci1962.0011183X000200020033x]
30. Mamlic, Z., Maksimovic, I., Canak, P., Mamlic, G., Đukić, V., Vasiljević, S., & Dozet, G. (2021). The use of electrostatic field to improve soybean seed germination in organic production. Agronomy, 11(8), 1473. [DOI:10.3390/agronomy11081473]
31. Michel, B. E., & Kaufmann, M. R. (1973). The osmotic potential of polyethylene glycol 6000. Plant Physiology, 51(5), 914-916. [DOI:10.1104/pp.51.5.914] [PMID] [PMCID]
32. Ministry of Agriculture-Jahad. 2019. Agricultural Sstatistics. Vol. 1. Crop Plants. Statistics, Information and communication Technology Center, Ministry of Agriculture-Jahad, Tehtan, Iran. [In Persian]
33. Mirmazloum, I., Kiss, A., Erdélyi, É., Ladányi, M., Németh, É. Z., & Radácsi, P. (2020). The effect of osmopriming on seed germination and early seedling characteristics of Carum carvi L. Agriculture, 10(4), 94. [DOI:10.3390/agriculture10040094]
34. Mohammadi, R., Roshandel, P., & Tadayon, A. (2018). Investigating the growth, physiology and antioxidant system of hyssop under the influence of magnetopriming. New Findings in Biological Sciences, 6(1), 106-115. SID. https://sid.ir/paper/250522/fa [DOI:10.29252/nbr.6.1.106]
35. Mohidem, N. A., Hashim, N., Shamsudin, R., & Che Man, H. (2022). Rice for food security: Revisiting its production, diversity, rice milling process and nutrient content. Agriculture, 12(6), 741. [DOI:10.3390/agriculture12060741]
36. Mshenskaya, N. S., Grinberg, M. A., Kalyasova, E. A., Vodeneev, V. A., Ilin, N. V., Slyunyaev, N. N., Mareev, E. A., & Sinitsyna, Y. V. (2023). The effect of an extremely low-frequency electromagnetic field on the drought sensitivity of wheat plants. Plants, 12(4), 826. [DOI:10.3390/plants12040826] [PMID] [PMCID]
37. Mumtaz, S., Javed, R., Rana, J. N., Iqbal, M., & Choi, E. H. (2024). Pulsed high power microwave seeds priming modulates germination, growth, redox homeostasis, and hormonal shifts in barley for improved seedling growth: Unleashing the molecular dynamics. Free Radical Biology and Medicine, 222, 371-385. [DOI:10.1016/j.freeradbiomed.2024.06.013] [PMID]
38. Nyasulu, M., Zhong, Q., Li, X., Liu, X., Wang, Z., Chen, L., He, H., & Bian, J. (2024). Uncovering novel genes for drought stress in rice at germination stage using genome wide association study. Frontiers in Plant Science, 15, 1421267. [DOI:10.3389/fpls.2024.1421267] [PMID] [PMCID]
39. Panuccio, M., Chaabani, S., Roula, R., & Muscolo, A. (2018). Bio-priming mitigates detrimental effects of salinity on maize improving antioxidant defense and preserving photosynthetic efficiency. Plant Physiology and Biochemistry, 132, 465-474. [DOI:10.1016/j.plaphy.2018.09.033] [PMID]
40. Paunov, M., Angelova, B., Goltsev, V., Atanasova, G., Atanasov, B., Atanasov, N., & Kouzmanova, M. (2025). Electromagnetic field used in precision agriculture does not induce long-term effects in wheat and maize. Proceedings of the Bulgarian Academy of Sciences, 78(7), 1083-1093. [DOI:10.7546/CRABS.2025.07.15]
41. Putri, A. E., Agustrina, R., & Marjunus, R. (2024). Germination responses of old seeds from lampung local rice to magnetic fields and drought stress. Biodidaktika: Jurnal Biologi dan Pembelajarannya, 19(2), 68-78. [DOI:10.30870/biodidaktika.v19i2.24902]
42. Rehman, H. U., Basra, S., Ahmed, M., & Farooq, M. (2011). Field appraisal of seed priming to improve the growth, yield, and quality of direct seeded rice. Turkish Journal of Agriculture and Forestry, 35(4), 357-365. [DOI:10.3906/tar-1004-954]
43. Rifna, E. J., Ramanan, K. R., & Mahendran, R. (2019). Emerging technology applications for improving seed germination. Trends in Food Science and Technology, 86, 95-108. [DOI:10.1016/j.tifs.2019.02.029]
44. Sarı, M. E., Demir, İ., Yıldırım, K., & Memiş, N. (2023). Magnetopriming enhance germination and seedling growth parameters of onion and lettuce seeds. International Journal of Agriculture Environment and Food Sciences, 7(3), 468-475. [DOI:10.31015/jaefs.2023.3.1]
45. Sarraf, M., Deamici, K. M., Taimourya, H., Islam, M., Kataria, S., Raipuria, R. K., Abdi, G., & Brestic, M. (2021). Effect of magnetopriming on photosynthetic performance of plants. International Journal of Molecular Sciences, 22(17), 9353. [DOI:10.3390/ijms22179353] [PMID] [PMCID]
46. Sathyabharathi, B., Nisha, C., Jaisneha, J., Nivetha, V., Aathira, B., Ashok, S., & Sampath, S. (2022). Screening of genotypes for drought tolerance using PEG 6000 in different landraces of rice (Oryza sativa L.). International Journal of Plant and Soil Science, 34(22), 1424-1434. [DOI:10.9734/IJPSS/2022/v34i2231515]
47. Shabrangy, A. (2024). Using magnetic fields to enhance the seed germination, growth, and yield of plants. In Maghuly F. (Ed.), Plant Functional Genomics: Methods in Molecular Biology, 2788. [DOI:10.1007/978-1-0716-3782-1_22] [PMID]
48. Sharafi, S. (2025). Enhanced seedling growth of annual medic under salt-drought stress through ultrasonic wave and magnetic field treatments. Applied Water Science, 15, 59. [DOI:10.1007/s13201-025-02399-0]
49. Sharma, H. S., Fleming, C., Selby, C., Rao, J., & Martin, T. (2014). Plant biostimulants: a review on the processing of macroalgae and use of extracts for crop management to reduce abiotic and biotic stresses. Journal of Applied Phycology, 26, 465-490. [DOI:10.1007/s10811-013-0101-9]
50. Siddique, F., Ahmed, M. S., Javaid, R. A., Hanif, A., Rabnawaz, M., Arshad, M., & Majeed, A. (2023). Screening of elite coarse rice lines for drought stress simulated by polyethylene glycol (PEG) at seedling stage. Pakistan Journal of Agricultural Research, 36(1), 71-79. [DOI:10.17582/journal.pjar/2023/36.1.71.79]
51. Singh, N., Singh, R., Meena, V., & Meena, R. (2015). Can we use maize (Zea mays) rhizobacteria as plant growth promoter. Vegetos, 28(1), 86-99. [DOI:10.5958/2229-4473.2015.00012.9]
52. Soran, M.-L., Stan, M., Niinemets, Ü., & Copolovici, L. (2014). Influence of microwave frequency electromagnetic radiation on terpene emission and content in aromatic plants. Journal of Plant Physiology, 171(15), 1436-1443. [DOI:10.1016/j.jplph.2014.06.013] [PMID] [PMCID]
53. Tanou, G., Fotopoulos, V., & Molassiotis, A. (2012). Priming against environmental challenges and proteomics in plants: update and agricultural perspectives. Frontiers in Plant Science, 3, 216. [DOI:10.3389/fpls.2012.00216] [PMID] [PMCID]
54. Ullah, A., Nisar, M., Ali, H., Hazrat, A., Hayat, K., Keerio, A. A., Ihsan, M., Laiq, M., Ullah, S., & Fahad, S. (2019). Drought tolerance improvement in plants: an endophytic bacterial approach. Applied Microbiology and Biotechnology, 103, 7385-7397. [DOI:10.1007/s00253-019-10045-4] [PMID]
55. Urnukhsaikhan, E., Bold, B. E., Khurelbaatar, L., Bazarvaani, A., & MishigOchir, T. (2025). Effects of electromagnetic field on seed germination, β-amylase activity, total protein content, water uptake, and growth of wheat seedlings (Triticum aestivum). Bioelectromagnetics, 46(5), e70011. [DOI:https://doi.org/10.1002/bem.70011] [PMID]
56. Vasiqeh Shamsabadi, A., Modarres Sanavy, S. A. M., Modarres Vamghi, S. M., & Keshavarz, H. (2018). Effect of magnetic field on some physiological traits and germination of safflower crop seeds and four important weed species. Journal of Plant Research (Iranian Journal of Biology), 31(1), 184-196. SID. https://sid.ir/paper/395946/fa. [In Persian]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
کلیه حقوق این وب سایت متعلق به مجله پژوهشهای بذر ایران می باشد.
طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق
© 2026 CC BY-NC 4.0 | Iranian Journal of Seed Research
Designed & Developed by : Yektaweb
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.