(بهار و تابستان)
برگشت به فهرست مقالات |
برگشت به فهرست نسخه ها
دانشگاه محقق اردبیلی ، t.saadat2020@gmail.com
چکیده: (174 مشاهده)
چکیده مبسوط
مقدمه: شوری مهمترین تنش محیطی است که با تأثیر بر ریخت‌شناسی، فیزیولوژی و مشخصات بیوشیمیایی گیاهان به ویژه در مناطق نیمه خشک و خشک، بهره وری گیاه را محدود می‌کند. شوری با به تاخیر انداختن جوانه‌زنی بذر و کاهش سرعت جوانه‌زنی، رشد گیاهچه را مختل می‌کند و در نهایت رشد بهینه گیاهچه را به تاخیر می‌اندازد. پرایمینگ بذر به عنوان یک روش سریع، آسان و موثر برای بهبود جوانه‌زنی، ویژگی‌های رشد گیاهچه و دفاع کلی گیاه در برابر تنش‌های غیرزیستی در بسیاری از محصولات زراعی برجسته است. پرایمینگ به عنوان تیمار بذر قبل از کاشت تعریف می‌شود که در آن بذرها به طور کامل در آب یا انواع محلول‌های شیمیایی غوطه‌ور می‌شوند و تا زمان استفاده بعدی خشک می‌شوند. این پژوهش با هدف بررسی تاثیر پرایمینگ با سدیم نیتروپروساید بر شاخص‌های جوانه‌زنی و صفات بیوشیمیایی گیاهچه برنج تحت تنش شوری اجرا گردید.
مواد و روش‌ها: آزمایش به صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملا تصادفی با 3 تکرار در دانشگاه محقق اردبیلی در سال 1402 انجام شد. تیمارهای آزمایشی شامل چهار سطح شوری (صفر، 50، 100 و 150 میلی‌مولار کلریدسدیم) و سه سطح سدیم نیتروپروساید (صفر، 40 و 80 میکرومولار) بود.
یافته‌ها: نتایج نشان داد که شوری شاخص‌های جوانه‌زنی و رشد شامل میانگین جوانه‌زنی روزانه، ضریب جوانه‌زنی، ضریب آلومتری، طول ریشه‌چه، طول ساقه‌چه و گیاهچه، وزن تر و خشک ریشه‌چه و ساقه‌چه را کاهش داد، ولی پرایمینگ بذر با سطوح مختلف سدیم نیتروپروساید به‌ویژه سطح 80 میکرومولار این صفات را بهبود بخشید. شوری درصد رطوبت گیاهچه را کاهش داد، به‌طوری بیش‌ترین درصد رطوبت گیاهچه (13/70 درصد) در شاهد بود. بیش‌ترین سرعت جوانه‌زنی روزانه و محتوای مالون دی‌آلدئید در شوری 150 میلی‌مولار مشاهده گردید. پرایمینگ سرعت جوانه‌زنی روزانه و مقدار مالون دی‌آلدئید را کاهش داد، به‌طوری که کم‌ترین سرعت جوانه‌زنی روزانه (08/0) و محتوای مالون دی‌آلدئید (159/0 میلی‌مول بر گرم وزن تر) در پرایمینگ با سدیم نیتروپروساید 80 میکرومولار حاصل شد. همچنین، شوری فعالیت آنزیم آلفا آمیلاز را نیز کاهش داد. به‌طوری‌که، کم‌ترین فعالیت آلفا آمیلاز (93/7 میلی‌گرم بر گرم وزن تر بذر) در شاهد (آب مقطر) و شوری 150 میلی‌مولار به‌دست آمد.
نتیجه‌گیری: نتایج نشان داد که تیمار بذر با سدیم نیتروپروساید80 میکرومولار مؤثرترین روش برای بهبود جوانه‌زنی و صفات بیوشیمیایی بذر برنج تحت تنش شوری محسوب می‌شود و می‌تواند اثرات مضر شوری بر برخی صفات در گیاهچه برنج را کاهش داده و رشد گیاهچه را بهبود بخشد.
جنبه‌های نوآوری:
مقدمه: شوری مهمترین تنش محیطی است که با تأثیر بر ریخت‌شناسی، فیزیولوژی و مشخصات بیوشیمیایی گیاهان به ویژه در مناطق نیمه خشک و خشک، بهره وری گیاه را محدود می‌کند. شوری با به تاخیر انداختن جوانه‌زنی بذر و کاهش سرعت جوانه‌زنی، رشد گیاهچه را مختل می‌کند و در نهایت رشد بهینه گیاهچه را به تاخیر می‌اندازد. پرایمینگ بذر به عنوان یک روش سریع، آسان و موثر برای بهبود جوانه‌زنی، ویژگی‌های رشد گیاهچه و دفاع کلی گیاه در برابر تنش‌های غیرزیستی در بسیاری از محصولات زراعی برجسته است. پرایمینگ به عنوان تیمار بذر قبل از کاشت تعریف می‌شود که در آن بذرها به طور کامل در آب یا انواع محلول‌های شیمیایی غوطه‌ور می‌شوند و تا زمان استفاده بعدی خشک می‌شوند. این پژوهش با هدف بررسی تاثیر پرایمینگ با سدیم نیتروپروساید بر شاخص‌های جوانه‌زنی و صفات بیوشیمیایی گیاهچه برنج تحت تنش شوری اجرا گردید.
مواد و روش‌ها: آزمایش به صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملا تصادفی با 3 تکرار در دانشگاه محقق اردبیلی در سال 1402 انجام شد. تیمارهای آزمایشی شامل چهار سطح شوری (صفر، 50، 100 و 150 میلی‌مولار کلریدسدیم) و سه سطح سدیم نیتروپروساید (صفر، 40 و 80 میکرومولار) بود.
یافته‌ها: نتایج نشان داد که شوری شاخص‌های جوانه‌زنی و رشد شامل میانگین جوانه‌زنی روزانه، ضریب جوانه‌زنی، ضریب آلومتری، طول ریشه‌چه، طول ساقه‌چه و گیاهچه، وزن تر و خشک ریشه‌چه و ساقه‌چه را کاهش داد، ولی پرایمینگ بذر با سطوح مختلف سدیم نیتروپروساید به‌ویژه سطح 80 میکرومولار این صفات را بهبود بخشید. شوری درصد رطوبت گیاهچه را کاهش داد، به‌طوری بیش‌ترین درصد رطوبت گیاهچه (13/70 درصد) در شاهد بود. بیش‌ترین سرعت جوانه‌زنی روزانه و محتوای مالون دی‌آلدئید در شوری 150 میلی‌مولار مشاهده گردید. پرایمینگ سرعت جوانه‌زنی روزانه و مقدار مالون دی‌آلدئید را کاهش داد، به‌طوری که کم‌ترین سرعت جوانه‌زنی روزانه (08/0) و محتوای مالون دی‌آلدئید (159/0 میلی‌مول بر گرم وزن تر) در پرایمینگ با سدیم نیتروپروساید 80 میکرومولار حاصل شد. همچنین، شوری فعالیت آنزیم آلفا آمیلاز را نیز کاهش داد. به‌طوری‌که، کم‌ترین فعالیت آلفا آمیلاز (93/7 میلی‌گرم بر گرم وزن تر بذر) در شاهد (آب مقطر) و شوری 150 میلی‌مولار به‌دست آمد.
نتیجه‌گیری: نتایج نشان داد که تیمار بذر با سدیم نیتروپروساید80 میکرومولار مؤثرترین روش برای بهبود جوانه‌زنی و صفات بیوشیمیایی بذر برنج تحت تنش شوری محسوب می‌شود و می‌تواند اثرات مضر شوری بر برخی صفات در گیاهچه برنج را کاهش داده و رشد گیاهچه را بهبود بخشد.
جنبه‌های نوآوری:
- پرایمینگ بذر با استفاده از سدیم نیتروپروساید سبب بهبود شاخص‌های جوانه‌زنی بذر برنج تحت شرایط شوری گردید.
- پرایمینگ با سدیم نیتروپروساید محتوای مالون دی‌آلدئید را کاهش و فعالیت آلفا آمیلاز را افزایش داد.
- غلظت 80 میکرمولار سدیم نیتروپروساید تاثیر بهتری بر شاخص‌های جوانه‌زنی و صفات بیوشیمیایی نشان داد.
شماره‌ی مقاله: 10
نوع مطالعه: پژوهشي |
موضوع مقاله:
سایر موضوعات
دریافت: 1402/10/27 | ویرایش نهایی: 1403/9/3 | پذیرش: 1403/1/26
دریافت: 1402/10/27 | ویرایش نهایی: 1403/9/3 | پذیرش: 1403/1/26
فهرست منابع
1. Ahmadi, M., Modarres-Sanavy, S.A.M., Kafi, M., Sefidkon, F. and Malekzadeh Shafaroudi, S. 2018. Effects of different levels of salinity stress on germination properties of medicinal plant Salvia leriifolia Benth. Iranian Journal of Seed Science and Technology, 7: 43-55. [In Persian with English Summary]
2. Ali, I., He, L., Ullah, S., Quan, Z., Wei, S. and Iqbal, A. 2020. Biochar addition coupled with nitrogen fertilization impacts on soil quality, crop productivity, and nitrogen uptake under double-cropping system. Food and Energy Security, 9(3): e208. [DOI:10.1002/fes3.208]
3. Alivand, R. 2012. The study of deterioration in oil seed crops under different storage conditions. M.Sc. dissertation, Faculty of Agriculture University of Tehran, Iran. [In Persian with English Summary].
4. Anjum, Z., Hayat, S., Ghazanfar, M.U., Ahmad, S., Adnan, M. and Hussian, I. 2020. Does seed priming with trichoderma isolates have any impact on germination and seedling vigor of wheat. International Journal of Botany Studies, 5(2): 65-68.
5. Apel, K. and Hirt, H. 2004. Reactive oxygen species: Metabolism, oxidative stress, and signal transduction. Annual Review of Plant Biology, 55: 373-399. [DOI:10.1146/annurev.arplant.55.031903.141701] [PMID]
6. Arshan, K., Samsampour, D. and Pasalari, H. 2023. The effect of sodium nitroprusside (SNP) on functional, phytochemical and physiological characteristics of peppermint (Mentha piperita L.) under salinity stress. Plant Process and Function, 12(56): 315-323. [In Persian with English Summary].
7. Azizi, M., Shayesteh, K., Danehkar, A. and Salmanmahiny, A .2020. A new ecosystem-based land classification of Iran for conservation goals. Environmental Monitoring and Assessment, 192(3):182. [DOI:10.1007/s10661-020-8145-1] [PMID]
8. Babaei Qaqlstany, A., Asadi Gakiyeh, M., Fallahi, N. and Hatami Ghare Ghoyni, N. 2016. Osmopriming effect on germination of wheat under allelopathic conditions of foxtail extract. Seed Research, 6(18): 11-19. [In Persian with English Summary]
9. Badem, A. and Söylemez, S. 2022, Effects of nitric oxide and silicon application on growth and productivity of pepper under salinity stress. Journal of King Saud University, 34: 102189. [DOI:10.1016/j.jksus.2022.102189]
10. Bagheri, M.Z. 2014. The effect of maize priming on germination characteristics, catalase and peroxidase enzyme activity and total protein content under salt stress. International Journal Biosciences, 4(2): 104-112. [In Persian with English Summary]
11. Balouchi, H. and Ostadian Bidgoly, R. 2018. Effect of seed deterioration on germination and antioxidant enzymes activity of oil flax (Linum usitatissimum L.) Red Bazrak genotype. Plant Process and Function, 7(23): 205-218. [In Persian with English Summary].
12. Basra, S.M.A., Pannu, I.A. and Afzal, I. 2003. Evaluation of seed vigor of hydro and matriprimed wheat (Triticum aestivum L.) seeds. International Journal of Agricultural Biological, 5(2): 121- 123.
13. Basra, S.M.A., Zia, M.N., Mehmood, T., Afzal, I. and Khaliq, A. 2002. Comparison of different invigoration techniques in wheat (Tiriticum aestivum L.) seeds. Pakistan Journal of Arid Agriculture, 5: 325-329.
14. Boniecka, J., Kotowicz, K., Skrzypek, E., Dziurka, K., Rewers, M., Jedrzejczyk, I., Wilmowicz, E., Berdychowska, J. and Dąbrowska, G.B. 2019. Potential biochemical, genetic and molecular markers of deterioration advancement in seeds of oilseed rape (Brassica napus L.). Industrial Crops and Products, 130(1): 478-490. [DOI:10.1016/j.indcrop.2018.12.098]
15. Chaichi, M., Nemati, A., Dadrasi, A., Heydari, M., Hassanisaadi, M., Yousef, A.R., Baldwin, T.C. and Mastinu, A. 2022. Germination of Triticum aestivum L.: Effects of soil-seed interaction on the growth of seedlings. Soil Systems, 6(2): 37. [DOI:10.3390/soilsystems6020037]
16. Dadshani, S., Sharma, R.C., Baum, M., Ogbonnaya, F.C., Léon, J. and Ballvora, A. 2019. Multidimensional evaluation of response to salt stress in wheat. PloS one, 14(9): 16-19. [DOI:10.1371/journal.pone.0222659] [PMID] []
17. Duman, I. 2006. Effect of seed priming with PEG and K3PO4 on germination and seedling growth in lettuce. Pakistan Journal of Biological Sciences, 9: 923-928. [DOI:10.3923/pjbs.2006.923.928]
18. Ebrahimi, O., Esmaili, M.M., Sabori, H. and Tahmasebi, A. 2013. Effects of salinity and drought stress on germination of two species of (Agropyron elongatum, Agropyron desertrum). Desert Ecosystem Engineering Journal, 1: 31-38. [In Persian with English Summary].
19. Eisvand, H.R. and Maddah Arefi, H. 2007. Effects of some plant growth regulators on the physiological quality of Bromus aged seed. Iranian Journal of Rangelands and Forest Plant Breeding and Genetic Research, 15(2): 159-171. [In Persian with English Summary].
20. Farhangjou, S.E., Khavarinezhad, R., Saadatmand, S., Najafi, F. and Babakhani, B. 2023. Effect of salicylic acid on some morphological and biochemical traits of rice (Oryza sativa L.) under salt stress. Journal of Plant Production, 30(2): 163-182. [In Persian with English Summary].
21. Farooq, S. and Azam, F. 2006. The use of cell membrane stability (CMS) technique to screen for salt tolerance wheat varieties. Journal of Plant Physiology, 163(6): 629-637. [DOI:10.1016/j.jplph.2005.06.006] [PMID]
22. Fathi Amirkhiz, K., Omidi, H., Heshmati, S. and Jafarzadeh, L. 2012. Study of black cumin (Nigella sativa L.) germination attributes and seed vigur under salinity stress by osmopriming accelerators pretreatment. Iranian Journal of Field Crops Research, 10(2): 299-310. [In Persian with English Summary]
23. Fathi, A., Baradaran, M. and Amerian, M.R. 2018. The effect of nitric oxide on seed germination and activities of some antioxidant enzymes in sesame under salt stress. Iranian Journal of Seed Science and Research, 5: 77-88. [In Persian]
24. Fatima, A., Husain, T., Suhel, M., Prasad, S.M. and Singh, V.P. 2022. Implication of nitric oxide under salinity stress: The possible interaction with other signaling molecules. Journal of Plant Growth Regulation, 41: 163-177. [DOI:10.1007/s00344-020-10255-5]
25. Ghanbari, M. and Karamnia, S. 2016. Evaluation of the effect of seed aging on some characteristics of bean (Phaseolus vulgaris L.) germination in the native stand of Gilan province under salt stress conditions. The 6th National Legume Conference of Iran, 4 April, Khorramabad, Iran. [In Persian with English Summary].
26. Gong, D., He, F., Liu, J., Zhang, C., Wang, Y., Tian, S., Sun, C. and Zhang X. 2022. Understanding of hormonal regulation in rice seed germination. Life (Basel), 12(7):1021. [DOI:10.3390/life12071021] [PMID] []
27. Guo, Y., Li, D., Liu, L., Sun, H., Zhu, L. and Zhang, K. 2022. Seed priming with melatonin promotes seed germination and seedling growth of Triticale hexaploide L, under PEG-6000 induced drought stress. Frontiers in Plant Science, 13: 932912. [DOI:10.3389/fpls.2022.932912] [PMID] []
28. Habib, N., Ali, Q., Ali, S., Haider, M.Z., Javed, M.T., Khalid, M., Perveen, R., Alsahli, A.A. and Alyemeni, M. N. 2021. Seed priming with sodium nitroprusside and H2O2 confers better yield in wheat under salinity: Water relations, antioxidative defense mechanism and ion homeostasis. Journal of Plant Growth Regulation, 40: 2433-2453. [DOI:10.1007/s00344-021-10378-3]
29. Habib, N., Ali, Q., Ali, S., Javed, M.T., Zulqurnain Haider, M., Perveen, R., Shahid, M.R., Rizwan, M., Abdel-Daim, M.M. and Elkelish, A. 2020. Use of nitric oxide and hydrogen peroxide for better yield of wheat (Triticum aestivum L.) under water deficit conditions: Growth, osmoregulation, and antioxidative defense mechanism. Plants, 9: 285. [DOI:10.3390/plants9020285] [PMID] []
30. Hawrylak-Nowak, B., Rubinowska, K., Molas, J., Woch, W., Matraszek-Gawron, R. and Szczurowska, A. 2019. Selenium-induced improvements in the ornamental value and salt stress resistance of Plectranthus scutellarioides (L.) R. Br. Folia Horticultureae, 31: 213-221. [DOI:10.2478/fhort-2019-0016]
31. He, J., Ren, Y., Chen, X. and Chen, H. 2014. Protective roles of nitric oxide on seed germination and seedling growth of rice (Oryza sativa L.) under cadmium stress. Ecotoxicology and Environmental Safety, 108: 114-119. [DOI:10.1016/j.ecoenv.2014.05.021] [PMID]
32. Hoogenboom, G. and Peterson, C.M. 1987. Shoot growth rate of soybean as affected by drought stress. Agronomy Journal, 79(4): 598-607.
https://doi.org/10.2134/agronj1987.00021962007900040003x [DOI:10.2134/agronj1987.00021962007900040004x]
33. Hosseinifard, M., Stefaniak, S., Ghorbani Javid, M., Soltani, E., Wojtyla, L. and Garnczarska, M. 2022. Contribution of exogenous proline to abiotic stresses tolerance in plants: a review. International Journal of Molecular Sciences, 23(9): 5186. [In Persian with English Summary]. [DOI:10.3390/ijms23095186] [PMID] []
34. ISTA. 2013. International Rules for Seed Testing. Bassersdorf, Switzerland: The International Seed Testing Association (ISTA).
35. Kabiri, R., Naghizadeh, M. and Delfani, M. 2021. Effect of sodium nitroprusside pretreatment on germination improvement and early growth of black cumin (Nigella sativa) under salinity stress. Iranian Journal of Seed Science and Research, 8(2): 177-194. [In Persian with English Summary]
36. Kasote, D., Sreenivasulu, N., Acuin, C. and Regina, A. 2021. Enhancing health benefits of milled rice: Current status and future perspectives. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 62(29): 8099-8119. [DOI:10.1080/10408398.2021.1925629] [PMID]
37. Kaur, S., Gupta, A.K. and Kaur, N. 2005. Seed priming increase crop yield possibly by modulating enzymes of sucrose metabolism in chickpea. Journal of Agronomy and Crop Science, 191: 81-87. [DOI:10.1111/j.1439-037X.2004.00140.x]
38. Kaur, S., Suhalia, A., Sarlach, R.S., Mohd, S., Pritpal, S., Gomti, G., Anureet, B. and Achla, S. 2022. Uncovering the Iranian wheat landraces for salinity stress tolerance at early stages of plant growth. Cereal Research Communications, 56: 6-13.
39. Kong, H., Zhang, Z., Qin, J. and Akram, N.A. 2021. Interactive effects of abscisic acid (ABA) and drought stress on the physiological responses of winter wheat (Triticum aestivum L.). Pakistan Journal of Botany, 53(5): 1545-1551. [DOI:10.30848/PJB2021-5(11)]
40. Li, X., Jiang, H., Liu, F., Cai, J., Dai, T., Cao, W. and Jinag, D. 2013. Induction of chilling tolerance in wheat during germination by pre-soaking seed with nitric oxide and gibberellin. Plant Growth Regulation, 71: 31-40. [DOI:10.1007/s10725-013-9805-8]
41. Liu, X., Quan, W. and Bartels, D. 2022. Stress memory responses and seed priming correlate with drought tolerance in plants: An overview. Planta, 255 (2): 45. [DOI:10.1007/s00425-022-03828-z] [PMID] []
42. Liu, Y., Liu, Y., Liu, H. and Shang, Y. 2018. Evaluating effects of ellagic acid on the quality of kumquat fruits during storage. Scientia Horticulturae, 227: 244-254. [DOI:10.1016/j.scienta.2017.08.055]
43. Ma, L., Yang, S., Simayi, Z., Gu, Q., Li, J., Yang, X. and Ding, J. 2018. Modeling variations in soil salinity in the oasis of Junggar Basin, China. Land Degradation and Development, 29: 551-562. [DOI:10.1002/ldr.2890]
44. Maguire, J. D. 1962. Speed of germination, aid in selection and evaluation for seedling emergence and vigour. Crop Science, 2: 176-177. [DOI:10.2135/cropsci1962.0011183X000200020033x]
45. Malik, J.A., AlQarawi, A.A., AlZain, M.N., Dar, B.A., Habib, M.M. and Ibrahim, S.N.S. 2022. Effect of salinity and temperature on the seed germination and seedling growth of desert forage grass Lasiurus scindicus Henr. Sustainability, 14: 8387. [DOI:10.3390/su14148387]
46. McCue, P. and Shetty, K. 2002. A biochemical analysis of mungbean (Vigna radiata) response to microbial polysaccharides and potential phenolic enhancing effects for nutraceutical applications. Food Biotechnology, 16: 57-79. [DOI:10.1081/FBT-120004201]
47. Meftahizade, H. and Rahmati, Z. 2021. Evaluation of germination and growth characteristics of guar (Cyamopsis tetragonoloba L.) genotypes under salinity stress condition. Iranian Journal of Seed Science and Technology, 10(2): 97- 109. [In Persian with English Summary]
48. Meloni, D.A., Oliva, M.A., Martinez, C.A. and Cambraia, J. 2003. Hotosynthesis and activity of superoxide dismutase, peroxidase and glutathione in cotton under salt stress. Environmental and Experimental Botany, 49: 69-76. [DOI:10.1016/S0098-8472(02)00058-8]
49. Mohamed, I.A., Shalby, N., El-Badri, A.M.A., Saleem, M.H., Khan, M.N., Nawaz, M.A., Qin, M., Agami, R.A., Kuai, J. and Wang, B. 2020. Stomata and xylem vessels traits improved by melatonin application contribute to enhancing salt tolerance and fatty acid composition of Brassica napus L. Plants. Agronomy, 10(8): 1186. [DOI:10.3390/agronomy10081186]
50. Mohapatra, S., Sirhindi, G. and Dogra, V. 2022. Seed priming with brassinolides improves growth and reinforces antioxidative defenses under normal and heat stress conditions in seedlings of Brassica juncea. Physiologia Plantarum, 174(6): e13814. [DOI:10.1111/ppl.13814] [PMID]
51. Mumtaz, S., Hameed, M., Ahmad, F., Ahmad, M.S.A., Ahmad, I., Ashraf, M. and Saleem, M.H. 2021. Structural and functional determinants of physiological pliability in Kyllinga brevifolia Rottb. For survival in hyper-saline saltmarshes. Water, Air, & Soil Pollution, 232(10): 424. [DOI:10.1007/s11270-021-05391-x]
52. Munns, R., James R.A. and Läuchli, A. 2006. Approaches to increasing the salt tolerance of wheat and other cereals. Journal of Experimental Botany, 57: 1025-1043. [DOI:10.1093/jxb/erj100] [PMID]
53. Mwando, E., Han, Y., Angessa, T.T., Zhou, G., Hill, C.B., Zhang, X.Q. and Li, C. 2020. Genome-wide association study of salinity tolerance during germination in barley (Hordeum vulgare L.). Frontiers in Plant Science, 11: 118. [DOI:10.3389/fpls.2020.00118] [PMID] []
54. Nandi, S., Das, G. and Sen-Mandi, S. 1995. β-amylase activity as an index for germination potential in rice. Annals of Botany, 75: 463-467. [DOI:10.1006/anbo.1995.1046]
55. Naseer, M.N., Rahman, F.U., Hussain, Z., Khan, I.A., Aslam, M.M., Aslam, A., Waheed, H., Khan, A.U. and Iqbal, S. 2022. Effect of salinity stress on germination, seedling growth, mineral uptake and chlorophyll contents of three Cucurbitaceae species. Brazilian Archives of Biology and Technology, 65: 1-10. [DOI:10.1590/1678-4324-2022210213]
56. Neill, S., Barros, R., Bright, J., Desikan, R., Hancock, J., Harrison, J., Morris, P., Ribeiro, D. and Wilson, I. 2008. Nitricoxide, stomatal closure, and abiotic stress. Journal of Experimental Botany, 59: 165-176. [DOI:10.1093/jxb/erm293] [PMID]
57. Oliveira, T.F., Santos. H.O., Ribeiro, J. B., Pereira, W.V, Pereira, A.A. and Cunha Neto, A.R. 2022. Priming Urochloa ruziziensis (R. Germ. & Evrard) seeds with signalling molecules improves germination. Journal of Seed Science, 44: e202244044. [DOI:10.1590/2317-1545v44262484]
58. Omidi, H., Leyla, J. and Hasanali, N. 2014. Seeds of medicinal plants and crops. Natural Resources and Environment, 269-189.
59. Panahi, M., Akbari, G.A., Roustakhiz, J. and Golbashi, M. 2012. Response of safflower genotypes (Carthamus tinctorius L.) to salinity stress via germination and early seedling growth. Iranian Journal of Science and Technology, 12: 211-222. [In Persian with English Summary]
60. Peanparkdee, M. and Iwamoto, S. 2019. Bioactive compounds from by-products of rice cultivation and rice processing: Extraction and application in the food and pharmaceutical industries. Trends in Food Science & Technology, 86: 109-117. [DOI:10.1016/j.tifs.2019.02.041]
61. Ragaey, M.M., Sadak, M.S., Dawood, M.F.A., Mousa, N.H.S., Hanafy, R.S. and Latef, A.A. H.A. 2022. Role of signaling molecules sodium nitroprusside and arginine in alleviating salt-induced oxidative stress in wheat. Plants, 11:1786. [DOI:10.3390/plants11141786] [PMID] []
62. Saadat, H., Sedghi, M., Seyed Sharifi, R. and Farzaneh, S. 2023a. The effect of priming with different levels of chitosan on physiological and biochemical traits in french bean (Phaseolus vulgaris L.) under salinity stress. Phant Production Technology, 14(2):75-89. [In Persian with English Summary] [DOI:10.22084/ppt.2023.26100.2075]
63. Saadat, H., Sedghi, M., Seyed Sharifi, R. and Farzaneh, S. 2023b. Expression of gibberellin synthesis genes and antioxidant capacity in common bean (Phaseolus vulgaris L. cv. Sadri) seeds induced by chitosan under salinity. Iranian Journal of Plant Physiology, 13(4): 4715-4728. [In Persian with English Summary]
64. Saadat, H., Soltani, E. and Sedghi, M. 2023c. The effect of seed priming with chitosan on germination characteristics and activity of antioxidant enzymes in rice seedlings (Oryza sativa L.) under salinity stress. Plant Process and Function, 12(54):239-258. [In Persian with English Summary]
65. Saadat, T., Sedghi, M., Seyed Sharifi, R. and Farzaneh, S. 2023d. Effect of chitosan on germination indices of common bean (Phaseolus vulgaris) (cv. Sedri) seeds under salt stress, Iranian Journal of Seed Research, 9(2): 151-162. [In Persian with English Summary] [DOI:10.61186/yujs.9.2.151]
66. Sadak, M., Bakhoum, G. and Tawfic, M. 2022. Chitosan and chitosan nanoparticle effect on growth, productivity and some biochemical aspects of Lupinus termis L. plant under drought conditions. Egyptian Journal of Chemistry, 65: 1-2.
67. Salek Mearaji, H., Tavakoli, A., Ghanimati, S. and Kathyrlo, P. 2019. The effect of salinity stress on traits related to Chenopodium quinoa germination. Plant Ecology, 15:59-69.
68. Seleiman, M.F., Semida, W.M., Rady, M.M., Mohamed, G.F., Hemida, K.A., Alhammad, B.A., Hassan, M.M. and Shami, A. 2020. Sequential application of antioxidants rectifies ion imbalance and strengthens antioxidant systems in salt-stressed cucumber. Plants, 9:1783. [DOI:10.3390/plants9121783] [PMID] []
69. Shang, J. X., Li, X., Li, C., and Zhao, L. 2022.The role of nitric oxide in plant responses to salt stress. International Journal of Molecular Sciences, 23: 6167. [DOI:10.3390/ijms23116167] [PMID] []
70. Sirova, J., Sedlaova, M., Piterkova, J., Luhova, L. and Petrivalsky, M. 2011. The role of nitric oxide in the germination of plant seeds and pollen. Plant Science, 181: 560-572. [DOI:10.1016/j.plantsci.2011.03.014] [PMID]
71. Sivritepe, H. O., Sivritepe, N. and Eris, A. 2003. The effects of NaCl priming on salt tolerance in melon seedlings grown under saline conditions. Scientia Horticulturae, 97: 229-237. [DOI:10.1016/S0304-4238(02)00198-X]
72. Sun, C., Zhang, H., Ge, J., Wang, C., Li, L. and Xu, L. 2022. Rice mapping in a subtropical hilly region based on sentinel-1 time series feature analysis and the dual branch BiLSTM model. Remote Sensing, 14(13): 3213. [DOI:10.3390/rs14133213]
73. Tania, S.S., Rhaman, M.S. and Hossain, M.M. 2020. Hydro-priming and halo-priming improve seed germination, yield and yield contributing characters of okra (Abelmoschus esculentus L.). Tropical Plant Research, 7: 86-93. [DOI:10.22271/tpr.2020.v7.i1.012]
74. Tsonev, T.D., Lazova, G.N., Stoinova Z.G. and Popova, L.P. 1998. A possible role for jasmonic acid in adaptation of barley seedling to salinity stress. Journal of Plant Growth Regulation, 17(3):153-159. [DOI:10.1007/PL00007029]
75. Uçarlı, C. 2020. Effects of salinity on seed germination and early seedling stage. Abiotic Stress Plants, 211: 1-22. [DOI:10.5772/intechopen.93647]
76. Uchida, A., Jagendorf, A.T., Hibino, T., Takabe, T. and Takabe, T. 2002. Effects of hydrogen peroxide and nitric oxide on both salt and heat stress tolerance in rice. Plant Science, 163: 515-523. [DOI:10.1016/S0168-9452(02)00159-0]
77. Varier, A., Vari, A.K. and Dadlani, M. 2010. The subcellular basis of seed priming. Current Science, 99(4): 450-456.
78. Wang, H.M., Xiao, X.R., Yang, M.Y., Gao, Z.L., Zang, J., Fu, X.M. and Chen, Y.H. 2014. Effects of salt stress on antioxidant defense system in the root of Kandelia candel. Botanical Studies, 55(1): 1-7. [DOI:10.1186/s40529-014-0057-3] [PMID] []
79. Yasir, T.A., Khan, A., Skalicky, M., Wasaya, A., Rehmani, M.I.A., Sarwar, N., Mubeen, K., Aziz, M., Hassan, M.M. and Hassan, F.A.S. 2021. Exogenous sodium nitroprusside mitigates salt stress in lentil (Lens culinaris Medik.) by affecting the growth, yield, and biochemical properties. Molecules, 26: 2576. [DOI:10.3390/molecules26092576] [PMID] []
80. Yi, Y., Peng, Y., Song, T., Lu, S., Teng, Z., Zheng, Q., Zhao, F., Meng, S., Liu, B. and Peng, Y. 2022. NLP2-NR module associated no is involved in regulating seed germination in rice under salt stress. Plants, 11: 795. [DOI:10.3390/plants11060795] [PMID] []
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
کلیه حقوق این وب سایت متعلق به مجله پژوهشهای بذر ایران می باشد.
طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق
© 2024 CC BY-NC 4.0 | Iranian Journal of Seed Research
Designed & Developed by : Yektaweb
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.