جلد 10، شماره 2 - ( (پاییز و زمستان) 1403 )
سال1403، جلد10 شماره 2 صفحات 200-187 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Javadi H, Salehi Shanjani P, Dadmand M, Ramazani Yeghaneh M. (2024). Evaluation of germination indices in Festuca spp. under chilling, osmo- and hormone priming. Iranian J. Seed Res.. 10(2), : 12 doi:10.61186/yujs.10.2.187
URL: http://yujs.yu.ac.ir/jisr/article-1-579-fa.html
URL: http://yujs.yu.ac.ir/jisr/article-1-579-fa.html
جوادی حمیده، صالحی شانجانی پروین، دادمند محمد، رمضانی یگانه معصومه. ارزیابی شاخص‌های جوانه‌زنی گونه‌های مختلف فستوکا (Festuca spp) تحت تیمارهای سرمادهی، اسمزی و هورمونی پژوهشهای بذر ایران 1403; 10 (2) :200-187 10.61186/yujs.10.2.187
ارزیابی شاخص‌های جوانه‌زنی گونه‌های مختلف فستوکا (Festuca spp) تحت تیمارهای سرمادهی، اسمزی و هورمونی
تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی ، hjavadim@yahoo.com
چکیده: (883 مشاهده)
چکیده مبسوط
مقدمه: گونه‌های جنس فستوکا (Festuca spp.) جزء گراس‌های علوفه‌ای هستند که اهمیت زیادی از نظر تامین علوفه و حفاظت از خاک دارند. بذور این گیاهان دارای خواب درونی (فیزیولوژیکی) بوده و براحتی قادر به جوانه‌زدن نیستند و باید تحت تیمارهای مختلف قرار بگیرند تا بتوانند جوانه بزنند در طبیعت این خواب با طی دوره سرمای زمستان شکسته می‌شود. به منظور تولید در سطح گسترده و تسریع در فرآیند جوانه‌زنی می‌توان از روش‌های مختلف شکست خواب استفاده کرد.
مواد و روش‌ها:. در این تحقیق سه گونه از جنس فستوکا (Festuca arundinacea، F. ovina، و F. rubra)، تحت تیمارهای مختلف پیش‌سرمادهی (4 درجه به‌مدت 14 روز)، پیش‌تیمار با نیترات‌پتاسیم 5/1% و اسیدجیبرلیک 150 و 200 میلی‌گرم برلیتر قرار گرفتند. و پس از طی 14 روز آزمون جوانه‌زنی، شاخص‌های مختلف جوانه‌زنی شامل: درصد و سرعت جوانه‌زنی، متوسط زمان جوانه‌زنی، شاخص بنیه بذر، طول ریشه‌چه، ساقه‌چه، گیاهچه و نسبت طول ریشه‌چه به ساقه‌چه محاسبه شدند.
یافته‌ها: نتایج تجزیه واریانس اختلاف معنی‌داری را بین گونه‌ها (به استثنای صفت درصد جوانه‌زنی و طول ریشه‌چه) و تیمارها (برای تمام صفات) نشان داد. برهمکنش گونه با تیمار نیز برای تمام صفات به استثنای صفات طول ریشه‌چه و گیاهچه، معنی‌دار بود. در بین سه گونه، درصد جوانه‌زنی از 67/26 تا 67/30 درصد و مقدار سرعت جوانه‌زنی از 92/1 تا 31/3 تعداد/ روز متغییر بود. متوسط زمان لازم برای جوانه‌زنی از 75/3 تا 36/4 روز و میزان شاخص بنیه بذر از 74/26 تا 02/43 متغییر بودند. طول ریشه‌چه بین 22/37 تا 45 میلی‌متر و طول ساقه‌چه بین 34/37 تا 33/81 میلی‌متر بود. بر اساس تجزیه به مولفه‌های اصلی، صفات درصد و سرعت جوانه‌زنی، شاخص بنیه بذر و طول ریشه‌چه وگیاهچه مهمترین عوامل در ایجاد تنوع در گونه‌های فستوکا معرفی شدند. در تعیین روابط همبستگی بین صفات، همبستگی بالای 70% بین درصد جوانه‌زنی با سرعت جوانه‌زنی و شاخص بنیه‌بذرمشاهده شد.
نتیجه‌گیری: در بین سه گونه، گونه Festucs rubra با داشتن بیشترین درصد و سرعت جوانه‌زنی، بنیه بذر، طول ریشه‌چه و کمترین زمان لازم برای جوانه‌زنی نسبت به دو گونه دیگر برتری داشت. و در بین تیمارهای اعمال شده، تیمارنیترات پتاسیم 5/1 درصد به همراه سرمادهی (4 درجه به‌مدت 14 روز)، تاثیر مثبت بر درصد و سرعت جوانه‌زنی، طول ریشه‌چه و تیمار اسیدجیبرلیک 150 میلی‌گرم برلیتر تاثیر مثبت بر طول ساقه‌چه و گیاهچه داشتند. وجود درصد و سرعت جوانه‌زنی بالا در بین گونه‌ها دلالت بر داشتن بنیه بالای بذور بود.
جنبه‌های نوآوری:
مقدمه: گونه‌های جنس فستوکا (Festuca spp.) جزء گراس‌های علوفه‌ای هستند که اهمیت زیادی از نظر تامین علوفه و حفاظت از خاک دارند. بذور این گیاهان دارای خواب درونی (فیزیولوژیکی) بوده و براحتی قادر به جوانه‌زدن نیستند و باید تحت تیمارهای مختلف قرار بگیرند تا بتوانند جوانه بزنند در طبیعت این خواب با طی دوره سرمای زمستان شکسته می‌شود. به منظور تولید در سطح گسترده و تسریع در فرآیند جوانه‌زنی می‌توان از روش‌های مختلف شکست خواب استفاده کرد.
مواد و روش‌ها:. در این تحقیق سه گونه از جنس فستوکا (Festuca arundinacea، F. ovina، و F. rubra)، تحت تیمارهای مختلف پیش‌سرمادهی (4 درجه به‌مدت 14 روز)، پیش‌تیمار با نیترات‌پتاسیم 5/1% و اسیدجیبرلیک 150 و 200 میلی‌گرم برلیتر قرار گرفتند. و پس از طی 14 روز آزمون جوانه‌زنی، شاخص‌های مختلف جوانه‌زنی شامل: درصد و سرعت جوانه‌زنی، متوسط زمان جوانه‌زنی، شاخص بنیه بذر، طول ریشه‌چه، ساقه‌چه، گیاهچه و نسبت طول ریشه‌چه به ساقه‌چه محاسبه شدند.
یافته‌ها: نتایج تجزیه واریانس اختلاف معنی‌داری را بین گونه‌ها (به استثنای صفت درصد جوانه‌زنی و طول ریشه‌چه) و تیمارها (برای تمام صفات) نشان داد. برهمکنش گونه با تیمار نیز برای تمام صفات به استثنای صفات طول ریشه‌چه و گیاهچه، معنی‌دار بود. در بین سه گونه، درصد جوانه‌زنی از 67/26 تا 67/30 درصد و مقدار سرعت جوانه‌زنی از 92/1 تا 31/3 تعداد/ روز متغییر بود. متوسط زمان لازم برای جوانه‌زنی از 75/3 تا 36/4 روز و میزان شاخص بنیه بذر از 74/26 تا 02/43 متغییر بودند. طول ریشه‌چه بین 22/37 تا 45 میلی‌متر و طول ساقه‌چه بین 34/37 تا 33/81 میلی‌متر بود. بر اساس تجزیه به مولفه‌های اصلی، صفات درصد و سرعت جوانه‌زنی، شاخص بنیه بذر و طول ریشه‌چه وگیاهچه مهمترین عوامل در ایجاد تنوع در گونه‌های فستوکا معرفی شدند. در تعیین روابط همبستگی بین صفات، همبستگی بالای 70% بین درصد جوانه‌زنی با سرعت جوانه‌زنی و شاخص بنیه‌بذرمشاهده شد.
نتیجه‌گیری: در بین سه گونه، گونه Festucs rubra با داشتن بیشترین درصد و سرعت جوانه‌زنی، بنیه بذر، طول ریشه‌چه و کمترین زمان لازم برای جوانه‌زنی نسبت به دو گونه دیگر برتری داشت. و در بین تیمارهای اعمال شده، تیمارنیترات پتاسیم 5/1 درصد به همراه سرمادهی (4 درجه به‌مدت 14 روز)، تاثیر مثبت بر درصد و سرعت جوانه‌زنی، طول ریشه‌چه و تیمار اسیدجیبرلیک 150 میلی‌گرم برلیتر تاثیر مثبت بر طول ساقه‌چه و گیاهچه داشتند. وجود درصد و سرعت جوانه‌زنی بالا در بین گونه‌ها دلالت بر داشتن بنیه بالای بذور بود.
جنبه‌های نوآوری:
- تاثیر استفاده از نیترات‌پتاسیم برای پیش‌تیمار بذرها، بهتراز آبدهی بذرها با نیترات‌پتاسیم است.
- اثرات اسموپرایمینگ (نیترات‌پتاسیم 5/1 %) بر روی خصوصیات جوانه‌زنی بذور فستوکا بهتراز هورمون پرایمینگ (اسیدجیبرایک) است.
- پیش‌تیمار با نیترات‌پتاسیم 5/1 درصد باعث افزایش تعداد بذرهای جوانه‌زده در حالی که تیمار با اسیدجیبرلیک 150 میل‌مولار باعث افزایش طول گیاهچه در بذور فستوکا می‌شود.
شماره‌ی مقاله: 12
نوع مطالعه: پژوهشي |
موضوع مقاله:
فیزیولوژی بذر
دریافت: 1402/2/25 | ویرایش نهایی: 1403/3/20 | پذیرش: 1402/10/2 | انتشار الکترونیک: 1403/3/20
دریافت: 1402/2/25 | ویرایش نهایی: 1403/3/20 | پذیرش: 1402/10/2 | انتشار الکترونیک: 1403/3/20
فهرست منابع
1. Ahmadloo, F., Tabari Kouchaksaraei, M., Azadi, P. and Hamidi, A. 2016. Improving germination of Hawthorn (Crataegus pseudoheterophylla Pojark.) seed by potassium nitrate, sulfuric acid and stratification. Journal of Plant Research (Iranian Journal of Biology), 29(2): 254-263. [In Persian with English Summary]
2. Abdul-baki, A.A. and Anderson, J.D. 1973. Vigor determination in soybean seed by multiplication. Crop Science, 3: 630-633. [DOI:10.2135/cropsci1973.0011183X001300060013x]
3. Ashraf, M. and Foolad, M.R. 2005. Pre-sowing seed treatment a shotgun approach to improve germination, plant growth, and crop yield under saline and non-saline conditions. Advances in Agronomy, 88: 223-271. [DOI:10.1016/S0065-2113(05)88006-X]
4. Ball, D.A., Frost, S.M., Fandrich, L., Tarasoff, C. and Mallory-Smith, C. 2008. Biological Attributes of Rattail Fescue. Weed Science, 56:26-31. [DOI:10.1614/WS-07-048.1]
5. Baskin, C.C. and Baskin, J.M. 1998. Seeds: Ecology, Biogeography and Evolution of Dormancy and Germination. Academic Press, San Diego, Ca, USA.
6. Basra, S.M.A., Zia, M.N., Mahmood, T., Afzal, I. and Khaliq, A. 2002. Comparison of different invigoration techniques in wheat (Triticum aestivum L.) seeds. Pakistan Journal of Arid Agriculture, 5: 6-11.
7. Bell. K.L. and Amen, R.D. 1970. Seed dormancy in Luzula spicata and Luzula parviflora. Ecology, 51: 492-496. [DOI:10.2307/1935384]
8. Bose, B. and Mishra, T. 1992. Response of wheat seed to pre-sowing seed treatments with Mg (NO3). Annals of Agricultural Research, 13: 132-136.
9. Bruggink, G.T., Ooms, J.J. and Van der Toorn, P. 1999. Induction of longevity in primed seeds. Seed Science Research, 9:49-53. [DOI:10.1017/S0960258599000057]
10. Cerabolini, B., De Andreis, R., Ceriani, R.M., Pierce, S. and Raimondi, B. 2004. Seed germination and conservation of endangered species from the Italian Alps: Physoplexis comosa and Primula glaucescens. Biological Conservation, 117: 351-356. [DOI:10.1016/j.biocon.2003.12.011]
11. Dahal, P., Bradford, K.J and Jones, R.A. 1990. Effects of priming and endosperm integrity on seed germination rates of tomato genotypes. II. Germination at reduced water potential. Journal of Experimental Botany, 41:1441-1453.
https://doi.org/10.1093/jxb/41.11.1431 [DOI:10.1093/jxb/41.11.1441]
12. Dearman, J., Brocklehust, P.A. and Drew, R.L.K. 1987. Effect of osmotic priming and aging on the germination and emergence of carrot and leek seed. Annuals of Applied Biology, 111: 717-722. [DOI:10.1111/j.1744-7348.1987.tb02029.x]
13. Ellis, R.H., Covell, S., Roberts, E.H. and Summerfield, R. J. 1986. The influence of temperature on seed germination rate in grain legumes. Journal of Experimental Botany, 37: 705-715. [DOI:10.1093/jxb/37.5.705]
14. Fu, J.R., Lue, X.H., Chen, R.Z., Zhang, B.Z., Liu, Z.S., Ki, Z.S. and Cai, C.Y. 1988. Osmo conditioning of peanut (Arachis hypogaea L.) seeds with PEG to improve vigor and some biochemical activities. Seed Science and Technology, 16: 197-212.
15. Gaut, B.S., Tredway, L.P., Kubik, C., Gaut, R.L. and Meyer, W. 2000. Phylogenetic relationships and genetics diversity among members of the Festuca -Lollium complex (Poaceae) based on ITS sequence data. Plant Systematics and Evolution, 224: 33-53. [DOI:10.1007/BF00985265]
16. Hasanuzzaman, M. and Fotopoulos, V. 2019. Priming and Pretreatment of Seeds and Seedlings, Implication in Plant Stress Tolerance and Enhancing Productivity in Crop Plants. Springer Singapore. P. 604. [DOI:10.1007/978-981-13-8625-1]
17. Inda, L.A., Segarra-Moragues, J.G., Müller, J., Peterson, P.M. and Catalán, P. 2008. Dated historical biogeography of the temperate Loliinae (Poaceae, Pooideae) grasses in the northern and southern hemispheres. Molecular Phylogenetics and Evolution, 46(3): 932-957. [DOI:10.1016/j.ympev.2007.11.022] [PMID]
18. ISTA. 1996. International Rules for Seed Testing. Seed Science and Technology, 13: 299-513
19. ISTA. 2007. International Rules for Seed Testing. https://www.seedtest.org/en/publications/international-rules-seed-testing.html
20. Kamkar, B., Koocheki, A.R., NassiriMahallati, M. and Rezvani Moghaddam, P. 2006. Cardinal temperatures for germination in three-millet species (Panicum miliaceum, Pennisetum glaucum and Setaria italica). Asian Journal of Plant Sciences, 5: 316-319. [DOI:10.3923/ajps.2006.316.319]
21. Kaye, T.N. 1997. Seed dormancy in high elevation plants: implications for ecology and restoration. In: Conservation and management of native plants and fungi. In: Kaye T.N., Liston A., Love R.M., Luoma D., Meinke R.J., Wilson M.V. (eds). Native Plant Society of Oregon, Corvallis, OR, USA. pp. 115-120.
22. Khavari, H., Goldani, M., Khajeh Hoseini, M. and Shor, M. 2017. Determination of cardinal temperatures and seed germination response to different temperatures in five varieties of grass turf. Journal of Horticultural Science, 30(4): 643-650.
23. Kolliker, R., Herrmann, D., Boller, B. and Widmer, F. 2003. Swiss Mattenklee landraces, a distinct and diverse genetic resource of red clover. Theoretical and Applied Genetics, 107: 306-315. [DOI:10.1007/s00122-003-1248-6] [PMID]
24. Loureiro, J., Kopecký, D., Castro, S., Santos, C. and Silveira, P. 2007. Flow cytometric and cytogenetic analyses of Iberian Peninsula Festuca spp. Plant Systematics and Evolution, 269: 89 -105. [DOI:10.1007/s00606-007-0564-8]
25. Maguire, J.D. 1962. Speed of germination in selection and evaluation for seedling vigor. Crop Science, 2: 176-177. [DOI:10.2135/cropsci1962.0011183X000200020033x]
26. Majidi, M.M. 2010. Evaluation of seed yield and yield components in Iranian landraces and foreign varieties of Tall Fescue (Festuca arundinacea Schreb.). Iranian Journal of Field Crop Science, 41(1): 93-103. [In Persian with English Summary]
27. Moradi, P. and Jafari, A.A. 2019. Forage yield and quality of Tall Festuca (Festuca arrundinacea) under irrigated and rainfed condition in Zanjan province. Iran Nature, 4(1): 51-56. [In Persian with English Summary]
28. Mozaffarian, V. 2006. A Dictionary of Iranian Plant Names. Farhang Moaser Publisher, Tehran, Iran. [In Persian]
29. Parera, C.A. and Cantliffe, D.J. 1994. Pre-sowing seed priming. Horticultural Research, 16: 109-141. [DOI:10.1002/9780470650561.ch4]
30. Rastegar. M.A. 2007. Cultivation of fodder plants. Berahmand Publisher. Tehran, Iran. 520 pp. [In Persian]
31. Rouhi, H.R., Aboutalebian, M.A. and Sharif-Zadeh, F. 2011. Seed priming improves the germination traits of tall Fescue (Festuca arundinacea). Notulae Scientia Biologicae, 3(2): 57-63. [DOI:10.15835/nsb325409]
32. Saberi, M., Tavili, A. and Miri, M. 2014. Investigation of the effects of different levels of gibberellic and salicylic acid on improvement of germination indices of Festuca arundinacea under stress with allelopathic compound. Journal of Natural Environment, 67(4): 415-424. [In Persian with English Summary]
33. Van Assche, J., Van Nerum, D. and Darius, P. 2002. The comparative germination ecology of nine Rumex species. Plant Ecology, 159: 131-142. [DOI:10.1023/A:1015553905110]
34. Wang, Z., Hopkins, A. and Main, R. 2001. Forage and turf grass biotechnology. Critical Reviews in Plant Science, 20: 573-619. [DOI:10.1080/20013591099281]
35. Wiese, A.M. and Binning, L.K. 1987. Calculating the threshold temperature of development for weeds. Weed Science, 35: 177-179. [DOI:10.1017/S0043174500079017]
36. Zomorodi, M., Khosravi, M., Khajeh Hoseini, M., Geshm, R. and Anvarkhah, S. 2013. Effect of priming on germination, vigor and artificial aging of seeds of tomato cultivars (Lycopersicum esculentum L.). Journal of Applied Research of Plant Ecophysiology, 1(1): 97-114. [In Persian with English Summary]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
کلیه حقوق این وب سایت متعلق به مجله پژوهشهای بذر ایران می باشد.
طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق
© 2024 CC BY-NC 4.0 | Iranian Journal of Seed Research
Designed & Developed by : Yektaweb
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.