جلد 12، شماره 2 - ( (پاییز و زمستان) 1404 )
سال1404، جلد12 شماره 2 صفحات 109-93 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Haghanifar S, Diyanat M, Hamidi A, Ghasemkhan-ghajar F, Soltani E. (2026). Germination Response and SOD Activity of Two Persian Camelthorn (Alhagi camelorum) Populations to Salinity after Seed Scarification. Iranian J. Seed Res.. 12(2), 93-109.
URL: http://yujs.yu.ac.ir/jisr/article-1-635-fa.html
URL: http://yujs.yu.ac.ir/jisr/article-1-635-fa.html
حقانی فر سیمین، دیانت مرجان، حمیدی آیدین، قاسم خان قاجار فریدون، سلطانی الیاس.(1404). واکنش جوانهزنی و فعالیت سوپراکسید دیسموتاز دو جمعیت خارشتر ایرانی (Alhagi camelorum) به شوری پس از رفع سختی بذر پژوهشهای بذر ایران 12 (2) :109-93
دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات ، m.diyanat@iau.ir
چکیده: (71 مشاهده)
هدف: با توجه به وسعت اراضی شور در جهان، این پژوهش با هدف بررسی تحمل خارشتر ایرانی (Alhagi camelorum) به تنش شوری در مرحله جوانهزنی و رشد اولیه پس از رفع سختی بذر، به منظور گسترش کشت آن به عنوان گیاه علوفهای انجام شد.
روش پژوهش: آزمایشی فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی با چهار تکرار در سال ۱۴۰۱ در آزمایشگاه تجزیه بذر مؤسسه تحقیقات ثبت و گواهی بذر و نهال اجرا شد. عوامل مورد بررسی شامل: (۱) جمعیت بذر (گرگان و مشهد)، (۲) سطوح شوری (صفر، ۱۰۰ و ۲۰۰ میلیمولار کلرید سدیم) و (۳) تیمارهای رفع سختی بذر (آب ۱۰۰ درجه سلسیوس بهمدت ۱ دقیقه و اسیدسولفوریک غلیظ بهمدت ۳۵ دقیقه) بودند. درصد جوانهزنی، متوسط زمان جوانهزنی روزانه، شاخص بنیه گیاهچه، طول ساقهچه و فعالیت آنزیم سوپراکسید دیسموتاز اندازهگیری شدند.
یافتهها: تنش شوری درصد جوانهزنی و طول ساقهچه را بهطور معنیداری کاهش داد. شاخصهای جوانهزنی در تیمار ۲۰۰ میلیمولار نسبت به شاهد تفاوت معنیداری نشان دادند. افزایش شوری، متوسط جوانهزنی روزانه را در همه تیمارها کاهش داد. بیشترین سطح شوری، طول ساقهچه را در جمعیت مشهد بهترتیب حدود ۶۵ و ۴۴ درصد و در جمعیت گرگان بهترتیب ۷۱ و ۶۴ درصد نسبت به شاهد کاهش داد. تیمار آب ۱۰۰ درجه سلسیوس همراه با تنش ۲۰۰ میلیمولار، فعالیت آنزیم سوپراکسید دیسموتاز را در جمعیت مشهد 9/56 درصد و در جمعیت گرگان 4/45 درصد نسبت به شاهد افزایش داد. همچنین تیمار اسیدسولفوریک با تنش ۲۰۰ میلیمولار، این فعالیت را در جمعیت مشهد 4/25 درصد و در جمعیت گرگان ۱۳ درصد افزایش داد.
نتیجهگیری: تیمار اسیدسولفوریک بهمدت ۳۵ دقیقه در هر دو جمعیت، درصد جوانهزنی را نسبت به تیمار آب ۱۰۰ درجه سلسیوس بهطور معنیداری افزایش داد. با توجه به افزایش بیشتر فعالیت آنزیم سوپراکسید دیسموتاز در جمعیت مشهد، میتوان نتیجه گرفت که این جمعیت تحمل بیشتری به شوری داشته و گزینه مناسبتری برای کشت در اراضی شور است.
جنبههای نوآوری
- اسیدسولفوریک (۳۵ دقیقه) و آب ۱۰۰ درجه سلسیوس (۱ دقیقه) سختی بذر را رفع و جوانهزنی را افزایش دادند.
- جمعیت مشهد مقاومتر از جمعیت گرگان به تنش شوری بود.
- هر دو جمعیت با افزایش فعالیت آنزیمهای پاداکسیدانی با شوری مقابله کردند.
نوع مطالعه: پژوهشي |
موضوع مقاله:
اکولوژی بذر
دریافت: 1404/1/17 | ویرایش نهایی: 1404/4/23 | پذیرش: 1404/6/19 | انتشار الکترونیک: 1404/12/29
دریافت: 1404/1/17 | ویرایش نهایی: 1404/4/23 | پذیرش: 1404/6/19 | انتشار الکترونیک: 1404/12/29
فهرست منابع
1. Abdul-baki, A. A., & Anderson, J. D. (1973). Vigor determination in soybean seed by multiplication. Crop Science, 13, 630-633. [DOI:10.2135/cropsci1973.0011183X001300060013x]
2. Ahmadi, M., Modarres-Sanavy, S. A. M., Kafi, M., Sefidkon, F., & Malekzadeh Shafaroudi, S. (2017). Effects of different levels of salinity stress on germination properties of medicinal plant Salvia leriifolia Benth. Iranian Journal of Seed Science and Technology, 6(2), 43-55. [In Persian] [DOI:10.22034/ijsst.2018.116354]
3. Amiri, B., Assareh, M., Jafari, M., Rasuli, B., & Jafari, A. (2012). Effect of NaCl & Na2SO4 on germination and seedling growth of Salicornia herbacea and Alhagi persarum. Iranian Journal of Range and Desert Research, 19(2), 233-243. [In Persian] [DOI:10.22092/ijrdr.2012.103154]
4. Athar, H., Khan, A., & Ashraf, M. (2008). Exogenously applied ascorbic acid alleviates salt-induced oxidative stress in wheat. Environmental and Experimental Botany, 63, 224-231. [DOI:10.1016/j.envexpbot.2007.10.018]
5. Bazoobandi, M., Barati, M., & Sadrabadi Haghighi, M. R. (2006). Physiological response of Alhagi pseudoalhagi to root exhausting management during fallow season. Iranian Journal of Weed Science, 2(2), 84-95. [In Persian].
6. Boroumand Rezazadeh, Z., & Koocheki, A. (2006). Evaluation of cardinal temperature for three species of medicinal plants, Ajowan (Trachyspermum ammi), Fennel (Foeniculum vulgare) and Dill (Anethum graveolens). Desert Journal, 11(2), 11-16. [In Persian] [DOI:10.22059/JDESERT.2006.31870]
7. Farkhah, A., Heidari-Sharifabad, H., Ghorbanli, M., & Shakker-Bazarnow, H. (2002). Effects of salinity on seed germination of Salsola dendroides, Alhagi persorum and Aeluropus lagopoides. Iranian Journal of Rangelands and Forests Plant Breeding Genetic Research, 9(1), 1-14. [In Persian] [DOI:10.22092/ijrfpbgr.2002.115790]
8. Feghhenabi, F., Hadi, H., Khodaverdiloo, H., & Van Genuchten, M. T. (2020). Seed priming alleviated salinity stress during germination and emergence of wheat (Triticum aestivum L.). Agricultural Water Management, 231, 106022. [DOI:10.1016/j.agwat.2020.106022]
9. Ghorbani, Z., Bagheri, R., Sarhadi, J., & Ahmadi, H. (2013). Evaluation of different salinity level on germination of Alhagi comelerum. The 1st Nature Conference Salinity Stress Plant Develop Strategy. Salinity Agriculture.
10. Haghanifar, S., Diyanat, M., Hamidi, A., Ghasem khan Ghajar, F., & Soltani, S. (2024). Investigating the effect of different chemical and non-chemical treatments on removing the hardness of seeds and stimulating the germination of the Persian camelthorn (Alhagi camelorum) seed. Iranian Journal of Seed Science and Technology, 13(2), 1-15. [In Persian] [DOI:10.22092/ijsst.2023.360490.1460]
11. Javadi, A., Shamaei, M., Mohammadi Ziazi, L., Pourabdollah, M., Dorudinia, A., Seyedmehdi, S. M., & Karimi, S. (2014). Qualification study of two genomic DNA extraction methods in different clinical samples. TANAFFOS (Respiration), 13(4), 41-47. [In Persian].
12. Kabiri, R., Naghizadeh, M. and Delfani, M. (2021). Effect of sodium nitroprusside pretreatment on germination improvement and early growth of black cumin (Nigella sativa) under salinity stress. Iranian Journal of Seed Sciences and Research, 8(2), 177-194. [In Persian] [DOI:10.22124/jms.2021.5219]
13. Kabiri, R., Hatami, A., Oloomi, H., Naghizadeh, M., Nasibi, F., & Tahmasebi, Z. (2018). Study the effect of melatonin on early growth and some physiological and germination characteristics of seed and moldavian balm (Dracocephalum moldavica) seedling under osmotic stress. Iranian Journal of Seed Science and Technology, 7(1), 25-40. [In Persian] [DOI:10.22034/ijsst.2018.108351.1027]
14. Kafi, M., Nezami, A., Hosseini, H., & Masoomi, A. (2005). Physiological effects of drought stress induced by polyethylene glycol on germination of lentil. Iranian Journal of Field Crop Research, 3(1), 69-80. [In Persian] [DOI:10.22067/gsc.v3i1.1293]
15. Koca, H., Bor, M., Ozdemir, F., & Turkan, I. (2007). The effect of salt stress on lipid peroxidation, antioxidative enzymes and proline content of sesame cultivars. Environmental and Experimental Botany, 60(3), 301-344. [DOI:10.1016/j.envexpbot.2006.12.005]
16. Maguire, J. D. (1962). Speed of germination-aid selection and evaluation for seedling emergence and vigor. Crop Science, 2, 176-177. [DOI:10.2135/cropsci1962.0011183X000200020033x]
17. Merku, M., Sepehri, A., & Abadi, A. S. (2017). The study of the effect of sulfuric acid on seed duck sleep disease (Alhagi camelorum). Journal of Plant and Biomass Research, 34, 46-61. [In Persian].
18. Miller, T. R., & Chapman, S. R. (1978). Germination responses of three forage grasses to different concentration of six salts. Journal of Range Management, 31(2), 123-124. [DOI:10.2307/3897659] [PMID]
19. Mohammadkhani, N., & Heidari, R. (2007). Effects of drought stress on protective enzyme activities and lipid peroxidation in two maize cultivars. Pakistan Journal of Biological Sciences, 10, 3835-3840. [DOI:10.3923/pjbs.2007.3835.3840] [PMID]
20. Munns, R. (2002). Comparative physiology of salt and water stress. Plant, Cell and Environment, 25(2), 239-250. [DOI:10.1046/j.0016-8025.2001.00808.x] [PMID]
21. Munns, R. (2005). Genes and salt tolerance: bringing them together. New Phytologist, 167, 645-663. [DOI:10.1111/j.1469-8137.2005.01487.x] [PMID]
22. Pirasteh-Anosheh, H. (2020). Breaking seed dormancy of camelthorn (Alhagi maurorum) using different treatments and salinity tolerance threshold level evaluation at germination stage. Iranian Journal of Seed Research, 7(1), 181-192. [In Persian] [DOI:10.29252/yujs.7.1.181]
23. Pirasteh-Anosheh, H., Ranjbar, G., Emam, Y., & Hashemi, S. E. (2017). Forage production of Alhagi using saline water and soil. International Haloculture Congress, 22-23 November, Yazd.
24. Postini, K., & Sioce mardedeh, G. H. (2001). K+/Na+ ratio and selective ion transfer in reaction to salinity stress in wheat. Journal of Agricultural Sciences, 32(3), 525-532. [In Persian].
25. Ranal, M., & De Santana, D. G. (2006). How and why to measure the germination process? Revista Brasilian Botanique, 29(1), 1-11. [DOI:10.1590/S0100-84042006000100002]
26. Ranjbar, G., Pirasteh-Anosheh, H., Banakar, M. H., & Miri, H. R. (2018). Review on halophytes researches in Iran: Explanation of challenges and offer approaches. Journal of Plant Ecophysiology, 32, 117-129. [In Persian].
27. Rashed Mohasel, M. H., Kazerooni Monfared, E., & Alebrahim, M. T. (2012). Effects of some environment factors on wild lettuce (Lactuca serriola) germination. Journal of Plant Protection Research, 25(4), 341-350. [In Persian].
28. Rawat, J., Sanwal, P., & Saxena, J. (2016). Potassium solubilizing microorganisms for sustainable agriculture. In: Meena, V., Maurya, B., Verma, J. and Meena, R., Eds., Potassium Solubilizing Microorganisms for Sustainable Agriculture, Springer India, 235-253. [DOI:10.1007/978-81-322-2776-2_17] [PMCID]
29. Sharashy, O. S. (2023). Methods of breaking seed physical dormancy and germination in native species of Alhagi graecorum Boiss (Al-Agool). Journal of Pure and Applied Sciences, 22(1), 79-83. [DOI:10.51984/jopas.v22i1.2318]
30. Soltani, A., Gholipoor, M., & Zeinali, E. (2006). Seed reserve utilization and seedling growth of wheat as affected by drought and salinity. Environmental and Experimental Botany, 55, 195-200. [In Persian] [DOI:10.1016/j.envexpbot.2004.10.012]
31. Turan, M. A., Elkarim, A. H. A., Taban, N., & Taban, S. (2010). Effect of salt stress on growth and ion distribution and accumulation in shoot and root of maize plant. African Journal of Agricultural Research, 5(7), 584-588.
32. Ullah, A., Tariq, A., Sardans, J., Peñuelas, J., Zeng, F., Graciano, C., Ahsan, M., Asghar, A., Raza, Y., Xiong, C., & Chai, X. (2022). Alhagi sparsifolia acclimatizes to saline stress by regulating its osmotic, antioxidant, and nitrogen assimilation potential. BMC Plant Biology, 22, 453. [DOI:10.1186/s12870-022-03832-1] [PMID] [PMCID]
33. Weisany, W., Sohrabi, Y., Heidari, G., Siosemardeh, A., & Ghassemi, K. (2012). Changes in antioxidant enzymes activity and plant performance by salinity stress and zinc application in soybean (Glycine max L.). Plant Osmics Journal, 5(2), 60-67.
34. Zamani, S., Ghasemnezhad, A., Alizadeh, M., & Alami, M. (2018). Effect of salinity and salicylic acid on morphological and photosynthetic pigments changes of callus of artichoke (Cynara scolymus L.). Journal of Crop Breeding, 10(26), 128-138. [In Persian] [DOI:10.29252/jcb.10.26.128]
35. Zeng, J., Zeng, F. J., Arndt, S. K., Guo, H. F., Yan, H. L., Xing, W. J., & Liu, B. (2008). Growth, physiological characteristics and ion distribution of NaCl stressed Alhagi sparsifolia seedlings. Chinese Science Bulletin, 53, 169-176. [DOI:10.1007/s11434-008-6020-5]
36. Zhang, X. L., Zeng, F. J., Liu, B., Liu, Z., An, G. Z., & Sun, X. W. (2010). Effects of different soil moisture treatments on the photosynthesis and dry matter accumulation of Alhagi sparsifolia seedlings. Arid Zone Research, 4, 649-655.
37. Zhao, K. F., Fan, H., Song, J., Sun, M. X., Wang, B. Z., Zhang, S. Q., & Ungar, I. A. (2005). Two Na+ and Cl− hyperaccumulators of the Chenopodiaceae. Journal of Integrative Plant Biology, 47, 311-318. [DOI:10.1111/j.1744-7909.2005.00057.x]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
کلیه حقوق این وب سایت متعلق به مجله پژوهشهای بذر ایران می باشد.
طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق
© 2026 CC BY-NC 4.0 | Iranian Journal of Seed Research
Designed & Developed by : Yektaweb
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.