جلد 7، شماره 2 - ( (پاییز و زمستان) 1399 )                   سال1399، جلد7 شماره 2 صفحات 191-207 | برگشت به فهرست نسخه ها


XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Ababaf M, Omidi H, Bakhshandeh A. Determination of Optimum Concentration and Time of Pre-Treatment with Plant Growth Regulators on Germination Indices of Catharanthus roseus Seed. Iranian J. Seed Res.. 2021; 7 (2) :191-207
URL: http://yujs.yu.ac.ir/jisr/article-1-448-fa.html
عباباف مرضیه، امیدی حشمت، بخشنده عبدالمهدی. تعیین مناسب‌ترین مدت‌زمان و غلظت پیش‌تیمار با تنظیم‌کننده‌های رشد گیاهی بر شاخص‌های جوانه‌زنی بذر پروانش (Catharanthus roseus). پژوهشهای بذر ایران. 1399; 7 (2) :191-207

URL: http://yujs.yu.ac.ir/jisr/article-1-448-fa.html


دانشگاه شاهد ، omidi@shahed.ac.ir
چکیده:   (554 مشاهده)
چکیده مبسوط
مقدمه: پروانش یکی از گیاهان دارویی-زینتی است که امروزه به‌عنوان گیاه دارویی در جهان مورد توجه قرارگرفته است. استفاده از تنظیم‌کننده‌های رشد گیاهی مانند اسید سالیسیلیک در زمان آبنوشی و پیش‌تیمار، فعالیت بذر و در نتیجه جوانه‌زنی و رشد گیاهچه را در بسیاری از گیاهان افزایش می‌دهد. اسید جاسمونیک نیز از تنظیم کننده‌های درونی رشد گیاه است که در جوانه زدن بذر، دانه گرده و رشد گیاه نقش دارد. با توجه به دوره رشد طولانی گیاه پروانش و کوچک بودن بذر و عدم استقرار مناسب آن در مزرعه با خاک‌هایی با بافت نیمه‌سنگین و سنگین، این تحقیق با هدف بررسی اثر پیش‌تیمار بذر با تنظیم کننده‌های رشد اسید سالیسیلیک و اسید جاسمونیک در غلظت‌ها و مدت زمان‌های متفاوت بر بهبود درصد و شاخص‌های جوانه‌زنی بذر پروانش انجام شد.
مواد و روش‌ها: این پژوهش به صورت فاکتوریل دو عاملی در قالب طرح کاملاً تصادفی، در سه تکرار در آزمایشگاه علوم و تکنولوژی بذر دانشکده علوم کشاورزی دانشگاه شاهد تهران در سال 1396 انجام شد. فاکتورهای مورد آزمایش شامل: غلظت اسید سالیسیلیک در پنج سطح (صفر، 01/0، 1/0، 5/0 و 1 میلی‌مولار) و غلظت اسید جاسمونیک در چهار سطح (صفر، 1، 10 و 100 میکرومولار) در زمان‌های (صفر، 6، 12، 24 و 48 ساعت) بودند. در پایان آزمایش صفاتی چون درصد جوانه‌زنی، سرعت جوانه‌زنی، متوسط زمان لازم برای جوانه‌زنی، متوسط جوانه‌زنی روزانه، ارزش جوانه‌زنی، شاخص طولی و وزنی بنیه بذر محاسبه شد. هم‌چنین صفات وزن خشک کل گیاهچه، وزن خشک ساقه‌چه، وزن خشک ریشه‌چه، طول ریشه‌چه، طول ساقه‌چه و طول کل گیاهچه اندازه‌گیری شد.
یافته‌ها: نتایج تحقیق نشان داد که اثر اسید سالیسیلیک، اسید جاسمونیک و زمان بر درصد جوانه‌زنی، سرعت جوانه‌زنی، میانگین زمان جوانه‌زنی، متوسط جوانه‌زنی روزانه، ارزش جوانه‌زنی، طول گیاهچه، شاخص وزنی بنیه بذر، شاخص طولی بنیه بذر و وزن خشک ریشه‌چه معنی‌دار بودند. بهترین مدت زمان برای پیش تیمار با اسید سالیسیلیک در این آزمایش 24 و 48 ساعت بود. در بین غلظت‌های کاربردی اسید سالیسیلیک، غلظت‌های 5/0 و 1 میلی‌مولار بهترین نتایج را نشان دادند. هم‌چنین بهترین مدت زمان و غلظت برای پیش‌تیمار با اسید جاسمونیک در این آزمایش 12 و 24 ساعت و 10 میکرومولار بود.
نتیجه‌گیری: نتایج حاصل از این آزمایش نشان داد که استفاده از اسید سالیسیلیک و اسید جاسمونیک برای پیش‌تیمار بذر موجب بهبود مؤلفه‌های جوانه‌زنی بذر می‌شود. علاوه بر غلظت پیش‌تیمار با اسید سالیسیلیک و اسید جاسمونیک، مدت زمان تماس بذر با این تنظیم‌کننده‌های رشد نیز حائز اهمیت است. مشاهده شد بین مدت زمان‌های مختلف پیش‌تیمار اختلاف معنی‌داری وجود دارد، بنابراین می‌توان بیان نمود که مدت‌زمان پیش‌تیمار بذر یکی از عوامل مهم پیش‌تیمار بذر هست و تعیین زمان مناسب پیش‌تیمار موجب جلوگیری از تأثیر منفی آن بر ویژگی‌های جوانه‌زنی و رشد گیاهچه بذرهای پیش‌تیمار شده می‌شود.
جنبه‌های نوآوری:
  1. مطلوب‌ترین غلظت اسید سالیسیلیک و مدت زمان پیش‌تیمار بذر پروانش مشخص شد.
  2. غلظت مناسب اسید جاسمونیک و مدت زمان مطلوب برای پیش‌تیمار بذر پروانش تعیین شد.
  3. تأثیر تنظیم‌کننده‌های رشد اسید سالیسیلیک و اسید جاسمونیک بر درصد و شاخص‌های جوانه‌زنی بذر پروانش بررسی شد.
متن کامل [PDF 400 kb]   (107 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: فیزیولوژی بذر
دریافت: 1398/8/10 | پذیرش: 1399/2/13

فهرست منابع
1. Abdul-Baki, A.A. and Anderson, J.D. 1973. Vigour determination in soybean by multiple criteria 1. Crop Science, 13(6): 630-633. [DOI:10.2135/cropsci1973.0011183X001300060013x]
2. Ansari, O. and Sharif-Zadeh. F. 2012. Does Gibberellic acid (GA), Salicylic acid (SA) and Ascorbic acid (ASc) improve mountain Rye (Secale montanum) seeds germination and seedlings growth under cold stress? International Research Journal of Applied and Basic Sciences, 3(8): 1651-1657.
3. Ansari, O., Tavakkol Afshari, R., Sharif-Zadeh, F. and Shayanfar. A. 2013. The role of priming on seed reserve utilization and germination of mountain rye (Secale montanum) seeds under salinity stress. Iranian Journal Field Crop Science, 44(2): 181-189. [In Persian with English Summary].
4. Arbaoui, M., Yahia, N. and Belkhodja, M. 2015. Germination of the tomato (Lycopersicon esculentum Mill.) in response to salt stress combined with hormones. International Journal of Agronomy and Agricultural Research, 7(3): 14-24.
5. Aslam, J., Mujib, A., Fatima, S. and Sharma, M. 2008. Cultural conditions affect somatic embryogenesis in Catharanthus roseus L. (G.) Don. Plant Biotechnology Reports, 2(3): 179-189. [DOI:10.1007/s11816-008-0060-9]
6. Azarnia, M., Biabani, A., Eisvand, H.R., Gholamalipour, E. and Safikhani. S. 2016. Effect of seed priming with gibberellic acid and salicylic acid on germination characteristic and seed and seedlings physiological quality of Lentil (Lens culinaris L.). Iranian Journal of Seed Research, 3(1): 59-73. [In Persian with English Summary].
7. Babaei Qaqlstany, A., Asadi Gakiyeh, M., Fallahi, N. and Hatami Ghare Ghoyni. N. 2016. Osmopriming effect on germination of wheat under allelopathic conditions of foxtail extract. Seed Research, 6(18): 11-19. [In Persian with English Summary].
8. Bandurska, H., Stroiński, A. and Kubiś, J. 2003. The effect of jasmonic acid on the accumulation of ABA, proline and spermidine and its influence on membrane injury under water deficit in two barley genotypes. Acta Physiologiae Plantarum, 25(3): 279-285. [DOI:10.1007/s11738-003-0009-0]
9. Basra, S. M., Ullah, E., Warraich, E., Cheema, M., and Afzal, I. 2003. Effect of storage on growth and yield of primed canola (Brassica napus) seeds. International Journal of Agriculture and Biology, 5(2): 117-120.
10. Brancalion, P., Novembre, A., Rodrigues, R. and Tay, D. 2008. Priming of Mimosa bimucronata seeds-a tropical tree species from Brazil. Acta Horticulturae, 782: 163-168. [DOI:10.17660/ActaHortic.2008.782.18]
11. Creelman, R. and Mullet, J.E. 1997. Biosynthesis and action of jasmonate in plant. Annual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology, 48(1): 355-381. [DOI:10.1146/annurev.arplant.48.1.355] [PMID]
12. Ellis, R.H. and Roberts, E.H. 1981. The quantification of ageing and survival in orthodox seeds. Seed Science and Technology, 9: 377-409.
13. Ghasemi Golezani, K. and Dalil, B. 2011.Germination and Seed Vigor Tests. Ferdowsi University of Mashhad. P.104
14. Ghasemi Jobshahr, E., and Khoramivafa. M. 2013. Effect of pretreatment of salicylic acid on germination and seedling properties Callendulla officinalis in salt stress condition. Journal of Plant Production Technology, 12(2): 57-70. [In Persian with English Summary].
15. Harris, D., Pathan, A., Gothkar, P., Joshi, A., Chivasa, W., and Nyamudeza, P. 2001. On-farm seed priming: using participatory methods to revive and refine a key technology. Agricultural Systems, 69(1-2): 151-164. [DOI:10.1016/S0308-521X(01)00023-3]
16. Hoogenboom, G., Huck, M., and Peterson, C. M. 1987. Root growth rate of soybean as affected by drought stress. Agronomy Journal, 79(4): 607-614. https://doi.org/10.2134/agronj1987.00021962007900040003x [DOI:10.2134/agronj1987.00021962007900040004x]
17. Huang, C., Wang, D., Sun, L. and Wei, L. 2016. Effects of exogenous salicylic acid on the physiological characteristics of Dendrobium officinale under chilling stress. Plant Growth Regulation, 79(2): 199-208. [DOI:10.1007/s10725-015-0125-z]
18. Hubbard, M., Germida, J. and Vujanovic, V. 2012. Fungal endophytes improve wheat seed germination under heat and drought stress. Botany, 90(2): 137-149. [DOI:10.1139/b11-091]
19. Ibrahim, E.A. 2016. Seed priming to alleviate salinity stress in germinating seeds. Journal of Plant Physiology, 192: 38-46. [DOI:10.1016/j.jplph.2015.12.011] [PMID]
20. Iqbal, M. and Ashraf, M. 2007. Seed treatment with auxins modulates growth and ion partitioning in salt‐stressed wheat plants. Journal of Integrative Plant Biology, 49(7): 1003-1015. [DOI:10.1111/j.1672-9072.2007.00488.x]
21. Kabiri, R., Hatami, A. and Naghizadeh. M. 2014. Effect of drought stress and its interaction with salicylic acid on fennel (Foeniculum vulgare Mill.) germination and early seedling growth. Journal of Medicinal Plants and By-Products, 2: 107-116.
22. Khoramdel, S., Rezvani Moghadam, P., Amin Ghafari, A. and Shabahang. J. 2012. Study the germination characteristics of black seed (Nigella sativa L.) under drought stress condition in different salicylic acid levels. Iranian Journal of Field Crops Research, 10(4): 709-725.
23. Kumari, N., Rai, P.K., Bara, B.M. and Singh. I. 2017. Effect of halo priming and hormonal priming on seed germination and seedling vigor in maize (Zea mays L.) seeds. Journal of Pharmacognosy and Phytochemistry, 6(4): 27-30.
24. Kuźniak, E. and Urbanek, H. 2000. The involvement of hydrogen peroxide in plant responses to stresses. Acta Physiologiae Plantarum, 22(2):195-203. [DOI:10.1007/s11738-000-0076-4]
25. Moghbeli, T. and Arvin, J. 2013. Effect of seed preparation with growth regulators on germination, growth and yield characteristics of (Cucumis melo L.). Journal of Crop Production and Processing, 4: 23-33.
26. Nawaz, A., Sheteiwy, M.S., Khan, S.M., Bukhari, S.A.H., Dawood, M., Guan, Y. and Hu, J. 2017. Exploring the mechanism of exogenous applied methyl jasmonate for germination inhibition in hybrid rice. Pakistan Journal of Life & Social Sciences, 15(1): 60-71.
27. Nejat, N., Valdiani, A., Cahill, D., Tan, Y.H., Maziah, M. and Abiri, R. 2015. Ornamental exterior versus therapeutic interior of Madagascar periwinkle (Catharanthus roseus): the two faces of a versatile herb. The Scientific World Journal, 2015: 1-19. [DOI:10.1155/2015/982412] [PMID] [PMCID]
28. Norastehnia, A., Sajedi, R. & Nojavan-Asghari, M. 2007. Inhibitory effects of methyl jasmonate on seed germination in maize (Zea mays): effect on α-amylase activity and ethylene production. General and Applied Plant Physiology, 33: 13-23.
29. Omidbeigi, R. 2006. Production and Processing of Medicinal Plants. Astane Ghodse Razaviee Publication. 419p. [In Persian].
30. Pagter, M., Bragato, C., Malagoli M. and Brix, H. 2009. Osmotic and ionic effects of NaCl and Na2SO4 salinity on Phragmites australis. Aquatic Botany, 90(1): 43-51. [DOI:10.1016/j.aquabot.2008.05.005]
31. Paparella, S., Araújo, S., Rossi, G., Wijayasinghe, M., Carbonera, D. and Balestrazzi, A. 2015. Seed priming: state of the art and new perspectives. Plant Cell Reports, 34(8): 1281-1293. [DOI:10.1007/s00299-015-1784-y] [PMID]
32. Paravr, A., Omidi, H., Esanejad, N. and Amirzadeh, M. 2015. Effect hydropriming seed germination and seedling growth coneflower (Echinaceac prupurea) under salt stress. Journal Seed Ecophysiology, 1(1): 57-69. [in Persian with English Summary].
33. Rivas-San Vicente, M. and Plasencia, J. 2011. Salicylic acid beyond defence: its role in plant growth and development. Journal of Experimental Botany, 62(10): 3321-3338. [DOI:10.1093/jxb/err031] [PMID]
34. Santini, B.A. and Martorell, C. 2013. Does retained seed priming drive the evolution of serotiny in drylands? An assessment using the cactus Mammillaria hernandezii. American Journal of Botany, 100(2): 365-373. [DOI:10.3732/ajb.1200106] [PMID]
35. Shakirova, F.M., Sakhabutdinova, A.R., Bezrukova, M.V., Fatkhutdinova, R.A. and Fatkhutdinova, D.R. 2003. Changes in the hormonal status of wheat seedlings induced by salicylic acid and salinity. Plant Science, 164(3): 317-322. [DOI:10.1016/S0168-9452(02)00415-6]
36. Taha, H., El-Bahr, M. and Seif-El-Nasr, M. 2009. In vitro studies on Egyptian Catharanthus roseus (L.) G. Don. IV: manipulation of some amino acids as precursors for enhanced of indole alkaloids production in suspension cultures. Australian Journal of Basic and Applied Sciences, 3(4): 3137-3144.
37. Vazirimehr, M., Ganjali, H., Rigi, K. and Keshtehgar, A. 2014. Effect of seed priming on quantitative traits corn. International Journal of Plant, Animal and Environmental Sciences, 4(2):134-140.
38. Zamani, N., and Roshandel, P. 2018. The effect of jasmonic acid on seed germination of halophytes species in high levels of salinity. Iranian Journal of Seed Science and Technology, 7(2): 29-42. [In Persian, with English Summary].
39. Zarei, B., Taghipour, Z. and Fazeli, A. 2016. The effect of seed priming with different concentrations of jasmonic acid on germination and early growth of (Nigella sativa L.) seedling under salinity stress. Journal of Seed Research, 6(2): 67-76. [In Persian, with English Summary].

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA

ارسال پیام به نویسنده مسئول


کلیه حقوق این وب سایت متعلق به مجله پژوهشهای بذر ایران می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2021 CC BY-NC 4.0 | Iranian Journal of Seed Research

Designed & Developed by : Yektaweb

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.