جلد 11، شماره 1 - ( (بهار و تابستان) 1403 )
سال1403، جلد11 شماره 1 صفحات 127-105 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Mashreghi A, Gholamalipour Alamdari E, Avarseji Z, Rahemi Karizaki A. (2024). Evaluation of the allelopathic potential of barley (Hordeum spontaneum) on the germination morphophysiological, and biochemical characteristics of cress (Lepidium sativum). Iranian J. Seed Res.. 11(1), 105-127.
URL: http://yujs.yu.ac.ir/jisr/article-1-611-fa.html
URL: http://yujs.yu.ac.ir/jisr/article-1-611-fa.html
مشرقی عبدالهادی، غلامعلی‌پور علمداری ابراهیم، اورسجی زیبا، راحمی کاریزکی علی. ارزیابی پتانسیل دگرآسیبی علف‌هرز جو وحشی (Hordeum spontaneum) بر خصوصیات جوانه‌زنی، مورفوفیزیولوژیکی و بیوشیمیایی گیاه شاهی (Lepidium sativum) پژوهشهای بذر ایران 1403; 11 (1) :127-105
دانشگاه گنبدکاووس ، eg.alamdari@gonbad.ac.ir
چکیده: (412 مشاهده)
چکیده مبسوط
مقدمه: ترکیب‌های شیمیایی در گیاهان شامل ترکیبات اولیه و یا ثانویه می‌باشند. ترکیبات دگرآسیب عمدتاً از نوع ثانویه بوده که از راه‌هایی نظیر آبشویی، تجزیه بقایای گیاهی، تبخیر و ترشحات ریشه‌ای انتشار می‌یابند. گیاهان دارای خاصیت دگرآسیب با موادی که در اطراف خود انتشار می‌دهند بر جوانه‌زنی و رشد سایر گیاهان اثرات منفی و یا حتی مثبت دارند. این اثرات وابسته به نوع اندام، غلظت، محل رویش گیاهان، بلوغ فیزیولوژیکی و ... می‌باشد.
مواد و روش‌ها: آزمایشی با هدف ارزیابی پتانسیل دگرآسیبی علف‌هرز جو وحشی (Hordeum spontaneum) بر خصوصیات جوانه‌زنی، مورفوفیزیولوژیکی و بیوشیمیایی گیاه محک و حساس به آللوشیمیایی شاهی در سال 1400 انجام شد. این آزمایش در قالب طرح کاملاً تصادفی در سه تکرار به اجرا درآمد. تیمارها شامل غلظت‌های مختلف عصاره آبی جو وحشی در 11 سطح (0، 10، 20، 30، 40، 50، 60، 70، 80، 90 و 100 درصد) بود.
یافته‌ها: نتایج نشان داد که غلظت‌های مختلف عصاره آبی علف‌هرز جو وحشی اثر کاهشی معنی‌داری بر صفات درصد و سرعت جوانه‌زنی، طول ریشه‌چه، طول ساقه‌چه، شاخص طولی بنیه بذر، وزن خشک ریشه‌چه و ساقه‌چه و به‌علاوه رنگیزه‌های فتوسنتزی نظیر کلروفیل‌هایa ، b و کل و کاروتنوئید‌ها نشان دادند، به گونه‌ای که میزان تأثیر پذیری آن‌ها وابسته به حد آستانه غلظت عصاره آبی بود. در مقابل محتوای آمینو اسید پرولین، قندهای محلول، نشت یونی، فعالیت آنزیم‌های کاتالاز و گایاکول پراکسیداز، غلظت مالون دی آلدهید و ترکیبات فنولی در مقایسه با شاهد افزایش نشان داد. در اکثر موارد، بیشترین افزایش این ترکیبات در غلظت 100 درصد عصاره آبی به‌دست آمد. این امر نشان‌دهنده تنش اکسیداتیو و سمیت سلولی بالای ناشی از ترکیبات دگرآسیب حاضر در عصاره آبی جو وحشی می‌باشد.
نتیجه‌گیری: با توجه به نتایج این آزمایش می‌توان استنباط نمود که عصاره آبی جو وحشی به‌دلیل خاصیت دگرآسیبی از جوانه‌زنی و رشد گیاهچه‌ای شاهی جلوگیری نمود. بنابراین با توجه به اثبات اثر دگرآسیبی علف‌هرز جو وحشی و دارا بودن زیست توده بالا، احتمالاً بتوان از ترکیبات زیست فعال حاضر در این گیاه جهت تولید علفکش سازگار با محیط زیست و یا حتی پتانسیلی برای تولید فرمولاسیون جدید علفکش‌های سنتزی در صورت اثبات اثر مثبت آن بر روی سایر گونه‌ها معرفی نمود.
جنبه‌های نوآوری:
مقدمه: ترکیب‌های شیمیایی در گیاهان شامل ترکیبات اولیه و یا ثانویه می‌باشند. ترکیبات دگرآسیب عمدتاً از نوع ثانویه بوده که از راه‌هایی نظیر آبشویی، تجزیه بقایای گیاهی، تبخیر و ترشحات ریشه‌ای انتشار می‌یابند. گیاهان دارای خاصیت دگرآسیب با موادی که در اطراف خود انتشار می‌دهند بر جوانه‌زنی و رشد سایر گیاهان اثرات منفی و یا حتی مثبت دارند. این اثرات وابسته به نوع اندام، غلظت، محل رویش گیاهان، بلوغ فیزیولوژیکی و ... می‌باشد.
مواد و روش‌ها: آزمایشی با هدف ارزیابی پتانسیل دگرآسیبی علف‌هرز جو وحشی (Hordeum spontaneum) بر خصوصیات جوانه‌زنی، مورفوفیزیولوژیکی و بیوشیمیایی گیاه محک و حساس به آللوشیمیایی شاهی در سال 1400 انجام شد. این آزمایش در قالب طرح کاملاً تصادفی در سه تکرار به اجرا درآمد. تیمارها شامل غلظت‌های مختلف عصاره آبی جو وحشی در 11 سطح (0، 10، 20، 30، 40، 50، 60، 70، 80، 90 و 100 درصد) بود.
یافته‌ها: نتایج نشان داد که غلظت‌های مختلف عصاره آبی علف‌هرز جو وحشی اثر کاهشی معنی‌داری بر صفات درصد و سرعت جوانه‌زنی، طول ریشه‌چه، طول ساقه‌چه، شاخص طولی بنیه بذر، وزن خشک ریشه‌چه و ساقه‌چه و به‌علاوه رنگیزه‌های فتوسنتزی نظیر کلروفیل‌هایa ، b و کل و کاروتنوئید‌ها نشان دادند، به گونه‌ای که میزان تأثیر پذیری آن‌ها وابسته به حد آستانه غلظت عصاره آبی بود. در مقابل محتوای آمینو اسید پرولین، قندهای محلول، نشت یونی، فعالیت آنزیم‌های کاتالاز و گایاکول پراکسیداز، غلظت مالون دی آلدهید و ترکیبات فنولی در مقایسه با شاهد افزایش نشان داد. در اکثر موارد، بیشترین افزایش این ترکیبات در غلظت 100 درصد عصاره آبی به‌دست آمد. این امر نشان‌دهنده تنش اکسیداتیو و سمیت سلولی بالای ناشی از ترکیبات دگرآسیب حاضر در عصاره آبی جو وحشی می‌باشد.
نتیجه‌گیری: با توجه به نتایج این آزمایش می‌توان استنباط نمود که عصاره آبی جو وحشی به‌دلیل خاصیت دگرآسیبی از جوانه‌زنی و رشد گیاهچه‌ای شاهی جلوگیری نمود. بنابراین با توجه به اثبات اثر دگرآسیبی علف‌هرز جو وحشی و دارا بودن زیست توده بالا، احتمالاً بتوان از ترکیبات زیست فعال حاضر در این گیاه جهت تولید علفکش سازگار با محیط زیست و یا حتی پتانسیلی برای تولید فرمولاسیون جدید علفکش‌های سنتزی در صورت اثبات اثر مثبت آن بر روی سایر گونه‌ها معرفی نمود.
جنبه‌های نوآوری:
- تفاوت در تأثیر غلظت‌های مختلف عصاره آبی علف‌هرز جو وحشی بر خصوصیات جوانه‌زنی و رشد گیاهچه‌ای گیاه محک و حساس به آللوشیمیایی شاهی مربوط به حد آستانه غلظت آن‌ها است.
- کاهش معنی‌دار خصوصیات جوانه‌زنی و رنگیزه‌های فتوسنتزی شاهی نشان‌دهنده شدت تنش اکسیداتیو ناشی از ترکیبات دگرآسیب در عصاره آبی جو وحشی می‌باشد.
- ویژگی دگرآسیبی علف‌هرز جو وحشی می‌تواند کاندید مناسبی برای تولید علفکش‌های زیستی باشد.
نوع مطالعه: پژوهشي |
موضوع مقاله:
فیزیولوژی بذر
دریافت: 1403/2/10 | ویرایش نهایی: 1403/4/20 | پذیرش: 1403/6/6 | انتشار الکترونیک: 1403/6/31
دریافت: 1403/2/10 | ویرایش نهایی: 1403/4/20 | پذیرش: 1403/6/6 | انتشار الکترونیک: 1403/6/31
فهرست منابع
1. Aasifa, G. and Badruzzaman, S.M. 2014. Evaluation of allelopathic effect of Eclipta alba (L.) Hassk. on biochemical activity of Amaranthus spinosus L., Cassia tora L. and Cassia sophera L. African Journal of Environmental Science and Technology, 8(1): 1-5. [DOI:10.5897/AJEST2013.1617]
2. Abdul-Baki, A.A. and Anderson, J.D. 1973. Vigor determination in soybean seed by multiple criteria. Journal of Crop Science, 13: 630-633. [DOI:10.2135/cropsci1973.0011183X001300060013x]
3. Abu-Romman, S., Shatnawi, M. and Shibli, R. 2010. Allelopathic effects of spurge (Euphorbia hierosolymitana) on wheat (Triticum durum). American-Eurasian Journal of Agriculture and Environmental Science, 7(3): 298-302.
4. Aebi, H.E. 1984. Catalase in vitro. Method in enzymology, 105: 121-126. [DOI:10.1016/S0076-6879(84)05016-3] [PMID]
5. Amoo, S.O., Ojo, A.U. and Van Staden, J. 2008. Allelopathic potential of Tetrapleura tetraptera leaf extracts on early seedling growth of five agricultural crops. South African Journal of Botany, 74: 149-152. [DOI:10.1016/j.sajb.2007.08.010]
6. Arnon, D.I. 1949. Copper enzymes in isolated chloroplasts. Polyphenoloxidase in Beta vulgaris. Plant Physiology, 24: 1-15. [DOI:10.1104/pp.24.1.1] [PMID] []
7. Asgarani, E. and Barati, F. 2019. Review of technology for recovery and removal of phenolic compounds from olive wastewater. Journal of Water and Sustainable Development, 5(2): 37-48. [In Persian]
8. Asgarpour, R., Khajeh-Hosseini, M. and Khorramdel, S. 2015. Effect of aqueous extract concentrations of saffron organs on germination characteristics and preliminary growth of three weed species. Journal of Saffron Research, 3(1): 81-96. [In Persian]
9. Ashraf, R., Sultana, B., Yaqoob, S. and Iqbal, M. 2017. Allelochemicals and crop management: a review. Current Science, 3(1): 1-13.
10. Ataei, A., Gholamalipour Alamdari, E., Avarseji, Z. and Rahemi Karizaki, A. 2021. Study of allelopathic effect of aqueous extract of various organs of Fumaria parviflora on morphological, physiological and biochemical characteristics of Lolium rigidum. Journal of Applied Biology, 34(4): 94-112. [In Persian]
11. Azarpanah, A., Alizadeh, O. and Dehghanzadeh, H. 2013. Investigation on proline and carbohydrates accumulation in Zea mays L. under water stress condition. Extreme life, biospeology and asterobiology. International Journal of the Bioflux Society, 5(1): 47-54.
12. Babu, R.C. and Kandasamy, O.S. 1997. Allelopathic effect of Eucalyptus globulus Labill on Cyperus rotundus L. and Cynodon dactylon L. Pers. Journal of Agronomy and Crop Science, 179(2): 123-126. [DOI:10.1111/j.1439-037X.1997.tb00507.x]
13. Bais, H.P., Epechedu, R.V., Gilroy, S., Callaway, R.M. and Vivanco, J.M. 2003. Allelopathy and extract plant invasion: from molecules and genes to species interactions. Science 301: 1377-1380. [DOI:10.1126/science.1083245] [PMID]
14. Bates, L.S., Walderen, R.D. and Taere, I.D. 1973. Rapid determination of free proline for water stress studies. Plant and Soil, 39: 205-207. [DOI:10.1007/BF00018060]
15. Berhow, M.A. and Vaughn, S.F. 1999. Higher plant flavonoids: biosynthesis and chemical ecology. In: principles and practices in plant ecology. CRC Press, Pp. 423-438. [DOI:10.1201/9780203742181-31]
16. Bogatek, R. and Gniazdowska, A. 2007. ROS and phytohormones in plant-plant allelopathic interaction. Plant Signaling and Behavior, 2(4): 317-318. [DOI:10.4161/psb.2.4.4116] [PMID] []
17. Bogatek, R., Gniazdowka, A., Stepien, J. and Kupidlowska, E. 2005. Convolvulus arvensis allelochemicals modeofactionin germination wheat seeds. Proceedings of the 4th world Congress on Allelopathy, (August, 11-14), Wagga, Pp. 263-266.
18. Bundig, C., Vu, T.H., Meise, P., Seddig, S., Schum, A. and Winkelmann, T. 2016. Variability in osmotic stress tolerance of starch potato genotypes (Solanum tuberosum L.) as revealed by an in vitro screening: role of proline, osmotic adjustment and drought response in pot trials. Journal of Agronomy and Crop Science, 203: 206-218. [DOI:10.1111/jac.12186]
19. Caceres, A. 2000. Calidad de la material prima para la elaboracion de productos fitofarma ceuticas. Primer Congreso International FITO 2000 Por la investigacion, conservacion y diffusion del conocimiento de las plantas medicinals 27-30 de septiembre, Lima, Peru.
20. Chance, B. and Maehly, A. 1955. Assay of catalases and peroxidases. Methods in enzymology, 2: 764-775. [DOI:10.1016/S0076-6879(55)02300-8]
21. Chaparzadeh, N., Najjar- Khodabakhsh, A., Pazhang, M. and Zarandi- Miandoab, L. 2015. Effect of salinity and ascorbic acid on growth, water and osmotic relations of Lepidium sativum. Iranian Journal of Plant Biology, 7(24): 1-4. [In Persian]
22. Cheng, F. and Cheng, Z. 2015. Research progress on the use of plant allelopathy in agriculture and the physiological and ecological mechanisms of allelopathy. Frontiers in Plant Science, 6: e 1020. [DOI:10.3389/fpls.2015.01020]
23. Chi-Ming, Y., Chyoung-Ni, L. and Chang-Hung, C. 2002. Effect of three allelopathic phenolics on chlorophyll accumulation of rice (Oryza sativa) seedling: I. Inhibition of supply-orientation. Botanical Bulletin of Academia Sinica, 43: 299-304.
24. De Mattos Ribeiro, V., Spiassi, A., Marcon, T.R., de Lima, G.P., Corsato, J.M. and Fortes, A.M.T. 2017. Antioxidative enzymes of Cucumis sativus seeds are modulated by Leucaena leucocephala extracts. Acta Scientiarum. Biological Sciences, 39(3): 373-380. [DOI:10.4025/actascibiolsci.v39i3.34801]
25. Dixit, V., Pandey, V. and Shyam, R. 2001. Differential antioxidative responses to cadmium in roots and leaves of pea (Pisum sativum cv. Azad). Journal of Experimental Botany, 52(358): 1101- 1109. [DOI:10.1093/jexbot/52.358.1101] [PMID]
26. El- Shora, H.M. and Abd El- Gawad, A.M. 2015. Physiological and biochemical responses of Cucurbita pepo L. mediated by Portulaca oleracea L. allelopathy. Fresenius Environmental Bulletin, 24: 386-393.
27. Elisante, F., Tarimo, M.T. and Ndakidemi, P.A. 2013. Allelopathic effect of seed and leaf aqueous extracts of Datura stramonium on leaf chlorophyll content, shoot and root elongation of Cenchrus ciliaris and Neonotonia wightii. American Journal of Plant Sciences, 4: 2332-2339. [DOI:10.4236/ajps.2013.412289]
28. Enteshari, S.H. and Ahrabi, F. 2011. Effect of the coumarin on some physiological and biochemical indexes of Conola-Hiola variety. Journal of Plant Biology, 3(10): 26- 23. [In Persian]
29. FAO. 2010. The Lurking menace of weeds. (Web site)
30. Farhoudi, R. and Lee, D.J. 2012. Evaluation of safflower (Carthamus tinctorius L. cv. Koseh) extract on germination and induction of α-amylase activity of wild mustard (Sinapis arvensis L.) seeds. Seed Science and Technology, 40: 2-6. [DOI:10.15258/sst.2012.40.1.17]
31. Farhoudi, R., Modhej, A. and Alavi, R. 2014. Effects of allelochemical compounds of barley (Hordeum vulgare L.) on seed germination, seedling growth and some antioxidant activities of Chenopodium album. Journal of Plant Protection, 28(2): 234-241. [In Persian]
32. Ghareman, A. 1996. General code of families and genera of flora of Iran. Publications of the Iran- Research Institute of Forests and Rangelands, 222 p. [In Persian]
33. Gholami, Sh. and Amini Dehaghi, D. 2022. The effect of priming with different concentrations of selenium on germination indices of quinoa seeds and seedlings. Journal of Crops Improvement, 24(1): 85-95. [In Persian]
34. Ghorbani, A., Razavi, S.M., Ghasemi Omran, V.O. and Pirdashti, H. 2018. Piriformospora indica inoculation alleviates the adverse effect of NaCl stress on growth, gas exchange and chlorophyll fluorescence in tomato (Solanum lycopersicum L.). Journal of Plant Biology, 20(4): 729-736. [In Persian] [DOI:10.1111/plb.12717] [PMID]
35. Goran, Y.A.R. and Sakri, F.A. 2009. Allelopathic effect of barley (Hordeum vulgare L.) water extract of shoot, root and soil beneath plants on seed germination and seedlings of wheat, barley cultivars and some weeds. Journal of Pure and Applied Sciences, 21(4): 10-19:4.
36. Gulzar, A. and Siddiqui, M.B. 2017. Allelopathic effect of Calotropis procera (Ait.) R. Br. on g growth and antioxidant activity of Brassica oleracea var. Botrytis. Journal of the Saudi Society of Agricultural Sciences, 16(4): 375-382. [DOI:10.1016/j.jssas.2015.12.003]
37. Hamidi, R. 2007. The effects of wild leaf and stem saps on germination and seedling growth of winter wheat. 2nd Iranian Weed Science Conference, Mashhad. [In Persian]
38. Hardgree, S.P., and Van Vactor, S.S. 2000. Germination and emergence of primed grass seeds under field and simulated-field temperature regimes. Annals of Botany, 85(3): 379- 390. [DOI:10.1006/anbo.1999.1076]
39. Harlan J.R. 1992. Crops and man. Madison, Wisconsin: University of Wisconsin Press.
40. Hatami Hampa, A., Javanmard, A., Alebrahim, M. and Sofalian, O. 2018. Allelopathic effects of aqueous extracts from sorghum (Sorghum bicolor L.) and Russian knapweed (Acroptilon repens L.) on seedling growth and enzymes activity of wheat, sugar beet, common lambsquarters and redroot pigweed. Journal of Iranian Plant Protection Research, 32(1): 101-119. [In Persian]
41. Heivachi, M., Gholamalipour Alamdari, E., Avarseji, Z. and Habibi, M. 2023. Effect of the Lactuca serriola L. extract on the cytogenetic behaviors of Crocus sativus L. roots and its allelopathic potential. South African Journal of Botany, 160: e 525-534. [DOI:10.1016/j.sajb.2023.07.026]
42. Herro, J.L. and Callawa, R.M. 2003. Allelopathy and exotic plant invasion. Plant and Soil, 256: 29-39. [DOI:10.1023/A:1026208327014]
43. Hosseini-Moghaddam, M., Moradi, A., Piri, R., Glick, B.R., Fazeli-Nasab, B. and Sayyed, R.Z. 2024. Seed coating with minerals and plant growth-promoting bacteria enhances drought tolerance in fennel (Foeniculum vulgare L.). Biocatalysis and Agricultural Biotechnology, 58: 1-12. [DOI:10.1016/j.bcab.2024.103202]
44. Hosseinzadeh, M., Kiarostami, Kh., Ilkhanizadeh, M. and Saboora, A. 2009. A study on allelopathic compounds derived from Hordeum spontaneum on carbohydrates, proteins and some enzyme of wheat (Triticum aestivum L.). Plant Researches (Iranian Journal of Biology), 22(3): 392-406. [In Persian]
45. Ivan, C., Sulmon, C., Gwenola, G. and Amrani, A. 2006. Involvement of soluble sugars in reactive oxygen species balance and responses to oxidative stress in plants. Journal of Experimental Botany, 57(3): 449-459. [DOI:10.1093/jxb/erj027] [PMID]
46. Kala, S. 2015. Effect of NaCl salt stress on antioxidant enzymes of isabgol (Plantago ovata forsk.) genotypes. International Journal of Food Science and Technology Research, 4(2): 40-43.
47. Kalantar, A. and Naghashbandi, N. 2008. Chemical stress induced by heliotrope (Helitropium europaeum L.) allelochemicals and increased activity of antioxidant enzymes. Pakistan Journal of Biological Sciences, 11(6): 915- 919. [DOI:10.3923/pjbs.2008.915.919] [PMID]
48. Khalili Mahalleh, J., Jalili, F. and Hosseini, N. 2014. Effect of four kinds of allelopathic weed on the germination and growth of forage sorghum. Journal of Research in Crop Science, 5(20): 107-122. [In Persian]
49. Khandakar, A.L. and Bradbeer, J.W. 1983. Jute seed quality. Dhaka, Bangladesh Agricultural Research Council. Dhaka, Bangladesh.
50. Kochert, G. 1978. Carbohydrate determination by the phenol-sulfuric acid method. Handbook of Phycological Methods: Physiological and Biochemical Methods, Cambridge University Press.
51. Kohli, R.K., Singh, H.P. and Batish, D.R. 2001. Allelopathy in agro-ecosystems. Food Products Press, USA, 447 p.
52. Kremer, R.J. and Ben-Hammouda, M. 2009. Allelopathic plants. 19. Barley (Hordeum vulgare L.). Allelopathy Journal, 24(2): 225-242.
53. Lorenzo, P., Palomera-Pe'rez, A., Reigosa, M.J. and Gonza'lez, L. 2011. Allelopathic interference of invasive Acacia dealbata Link on the physiological parameters of native understory species. Journal of Plant Ecology, 212:403-411. [DOI:10.1007/s11258-010-9831-9]
54. Macias, F.A. 1995. Allelopathy in the search for natural herbicides models. In: allelopathy. Organisms, Processes and Applications (eds.), American Chemical Society, pp: 310-329. [DOI:10.1021/bk-1995-0582.ch023]
55. Mahdavikia, F., Saharkhiz, M.J. and Karami, A. 2017. Defensive response phenolic compounds of radish seedlings to the oxidative stress arising from phenolic compounds in the extract of peppermint (Mentha piperita L.). Scientia Horticulturae, 214: 133-140. [DOI:10.1016/j.scienta.2016.11.029]
56. Makizadeh Tafti, M. and Farhodi, R. 2017 Investigating the allelopathic effect of aqueous extract of barley on seedling growth and cell membrane stability of wild oat and rye weeds. Journal of Plant Production Science, 7(1): 65-72. [In Persian]
57. Malick, C.P. and Singh, M.B. 1980. In plant enzymology and histo enzymologhy. Kalyani Publishers, New Dehli, 286 p.
58. Mighani, F. 2003. Allelopathy. Pajouhesh and Sazandegi Publisher, 256 p. [In Persian]
59. Mirsky, S.B., Ryan, M.R., Teasdal, J.R., Curran. W.S., Reberg-Horton, C.S., Spargo, J.T., Wells, M.S., Keene, C.L. and Moyer, J.W. 2013. Overcoming weed management challenges in cover crop-based organic rotational no-till soybean production in the eastern United States. Journal of Weed Technology, 27: 193-200. [DOI:10.1614/WT-D-12-00078.1]
60. Mohamed, F.I. and El-Ashery, Z.M. 2012. Cytogenetic effect of allelochemicals of Brassica nigra extract on Pisum sativum. World Applied Sciences Journal, 20(3): 344-353.
61. Moradi, A., Hoseini-Moghadam, M. and Piri, R. 2018. Effect of seed inoculation with Plant Growth Promoting Rhizobactria (PGPR) on some germination, biochemical indices and element contents of fennel (Foeniculum vulgare L.) under salinity stress. Iranian Journal of Field Crop Science, 49(3): 151-165. [In Persian]
62. Nielsen, K.A., Olsen, C.E. Pontoppidan, K. and Moller, B.L. 2002. Leucine- derived cyano glucosides in barley. Journal of Plant Physiology, 129(3): 1066-1075. [DOI:10.1104/pp.001263] [PMID] []
63. Regosa, M. and Pedrol, N. 2002. Allelopathy from molecules to ecosystems. Science publishers' GNC. NH. USA, pp. 12-195.
64. Rice, E.L. 1984. Allelopathy. 2nd Edition, Academic Press, New York, 422 p.
65. Safahani, A.R. and Ghooshchi, F. 2014. Allelopathic effects of aqueous and residue of different weeds on germination and seedling growth of wheat. The Journal of Plant Research (Iranian Journal of Biology), 27(1): 100-109. [In Persian]
66. Siddiqui, Z.S. and Zaman, A.U. 2005. Effects of Capsicum leachates on germination, seedling growth and chlorophyll accumulation in Vigna radiata L. Wilczek seedlings. Pakistan Journal of Botany, 37: 941-947.
67. Singh, A., Singh, D. and Singh, N.B. 2009. Allelochemical stress produced by aqueous leachate of Nicotiana plumbaginifolia Viv. Plant Growth Regulation, 58: 163-171. [DOI:10.1007/s10725-009-9364-1]
68. Singh, T.N., Paleg, I.G. and Aspinall, D. 1973. Stress metabolism I. Nitrogen metabolism and growth in the barley plant during water stress. Australian Journal of Biological Sciences, 26(1): 45-56. [DOI:10.1071/BI9730045]
69. Sottero, B., Leonarduzzi, G., Testa, G., Gargiulo, S., Poli, G. and Biasi, F. 2019. Lipid oxidation derived aldehydes and oxysterols between health and disease. European Journal of Lipid Science and Technology, 121(1): e 1700047. [DOI:10.1002/ejlt.201700047]
70. Tripathi, S., Tripathi, A. and Kori, D.C. 1999. Allelopathic evaluation of Tectona grandis leaf, root and soil aqueous extracts on soybean. Indian Journal of Forestry, 22(4): 366-374.
71. Valentovic, P., Luxova, M., Kolarovi, L. and Gasparikora, O. 2006. Effect of osmotic stress on compatible solutes content, membrane stability and water relation in two maize. Plant Soil Environment, 52(4):186-191. [DOI:10.17221/3364-PSE]
72. Verdeguer, M., García- Rellán, D., Boira, H., Pérez, E., Gandolfo, S. and Blázquez, M.A. 2011. Herbicidal activity of Peumus boldus and Drimys winterii essential oils from Chile. Molecules, 16: 403-411. [DOI:10.3390/molecules16010403] [PMID] []
73. Wang, C., Liu, J. and Zhou, J. 2017. N deposition affects allelopathic potential of Amaranthus retroflexus with different distribution regions. Anais da Academia Brasileira de Ciências, 89(2): 919-926. [DOI:10.1590/0001-3765201720160513] [PMID]
74. Yaghoobi, M., Sanikhani, M., Samimi, Z. and Kheiry, A. 2022. Selection of a suitable solvent for bioactive compounds extraction of myrtle (Myrtus communis L.) leaves using ultrasonic waves. Journal of Food Processing and Preservation, 46(3): e16357. [DOI:10.1111/jfpp.16357]
75. Ziaebrahimi, L., Khavari- Nejad, R.A., Fahimi, H. and Nejadsatari, T. 2007. Effects of aqueous eucalyptus extracts on seed germination, seedling growth and activities of peroxidase and polyphenoloxidase in three wheat cultivar seedlings (Triticum aestivum L.). Pakistan Journal of Biological Sciences, 10(19): 3415-3419. [DOI:10.3923/pjbs.2007.3415.3419] [PMID]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
کلیه حقوق این وب سایت متعلق به مجله پژوهشهای بذر ایران می باشد.
طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق
© 2024 CC BY-NC 4.0 | Iranian Journal of Seed Research
Designed & Developed by : Yektaweb
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.