جلد 10، شماره 2 - ( (بهار و تابستان) 1400 )
جلد 10 شماره 2 صفحات 64-50 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Imani S, Moosavi M R, Zare R, Basirnia T. (2021). Optimum substrate and carrier for Purpureocillium lilacinum and its effectiveness against Meloidogyne javanica on tomato. Plant Pathol. Sci.. 10(2), 50-64. doi:10.52547/pps.10.2.50
URL: http://yujs.yu.ac.ir/pps/article-1-348-fa.html
URL: http://yujs.yu.ac.ir/pps/article-1-348-fa.html
ایمانی سعید، موسوی سید محمد رضا، زارع رسول، بصیرنیا طاهره. بستر و حامل بهینه برای Purpureocillium lilacinum و تأثیر آن بر Meloidogyne javanica روی گوجه‌فرنگی دانش بیماری شناسی گیاهی 1400; 10 (2) :64-50 10.52547/pps.10.2.50
گروه بیماریشناسی گیاهی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد مرودشت ، rmmoosavi@miau.ac.ir
چکیده: (3416 مشاهده)
ایمانی س، موسوی س م ر، زارع ر، بصیرنیا ط (1400) بستر و حامل بهینه برای Purpureocillium lilacinum و تأثیر آن بر Meloidogyne javanica روی گوجه‌فرنگی. دانش بیماریشناسی گیاهی 10(2): 64-50. Doi: 10.2982/PPS.10.2.50.
مقدمه: نماتد خاکزی مولد غده ریشه Meloidogyne javanica خسارت‌زیادی به گوجه فرنگی هر ساله وارد می‌کند. مدیریت آن با سمهای شیمیایی اغلب دشوار و پرهزینه است و باعث از بین رفتن ریزجانداران مفید خاک می‌شود، بنابراین باید با روش بی‌خطر مبارزه زیستی جایگزین گردد. قارچ Purpureocillium lilacinum عامل مهم مبارزه زیستی با نماتدهای غده ریشه و سیستی است. این پژوهش، برای تعیین بستر و حامل مناسب این قارچ و تاثیر آن بر این نماتد در گوجه فرنگی اجرا شد. مواد و روش‌ها: قارچ روی بسترهای دانه‌های ارزن، ذرت، یونجه و شبدر در شرایط آزمایشگاهی کشت شد و هاگدهی آن در سه بازه‌ی زمانی 10، 20 و 30 روز مورد ارزیابی قرار گرفت. ماندگاری هاگ قارچ در سه حامل تالک، کائولن و پودر چوب بلال ذرت طی 12 ماه بررسی شد. تاثیر قارچ در حامل‌های فوق بر M. javanica روی گوجه فرنگی در شرایط گلخانه در قالب طرح کاملا تصادفی آزمایش شد. یافته‌ها: قارچ روی بستر دانه‌ی ارزن 30 روز پس از کشت، بیشترین میزان هاگ را در یک گرم بستر تولید کرد. همچنین روی پودر چوب بلال ذرت در طول 12 ماه بیشترین ماندگاری هاگ را در یک گرم حامل داشت. قارچ فرموله شده در حامل پودر چوب بلال ذرت در شرایط گلخانه‌ای بالاترین توانایی مهار نماتد (95%) را داشت که از نظر آماری شبیه نماتدکش فلوپیرام بود. همچنین این فرمولاسیون در ماندگاری هاگ قارچ در خاک و روی ریشه و در پی آن کاهش شاخص‌های بیماری‌زایی نماتد و رشد بهتر گیاه موثرتر بود. نتیجه‌گیری: دانه‌ی ارزن بستری مناسب برای تکثیر قارچ می‌باشد و حامل پودر چوب بلال ذرت یک ماده‌ی مناسب جهت ماندگاری قارچ است و می‌تواند پایه‌ی یک فرمولاسیون مناسب جامد برای این قارچ در جهت مهارزیستی با نماتدM. javanica باشد.
فهرست منابع
1. Abad P, Castagnone-Sereno P, Rosso MN, de Almeida Engler J, Favery B (2009) Invasion, Feeding and Development. Pp. 163-181. In: RN Perry, M Moens, JL Starr (eds.). Root-Knot Nematodes. CABI Publishing, Waligford, UK. [DOI:10.1079/9781845934927.0163]
2. Abbott WS (1925) A method of computing the effectiveness of an insecticide. Journal of Economic of Entomology 18:265-276. [DOI:10.1093/jee/18.2.265a]
3. Agrios GN (2005) Plant Pathology. 5th (ed.). Academic Press, The Netherlands, 922p.
4. Ahmad RZ, Sidi BB, Endrawati D, Ekawasti F, Chaerani C (2019) Paecilomyces lilacinus and P. variotii as a predator of nematode and trematode eggs. Earth and Environmental Science 299:012056. [DOI:10.1088/1755-1315/299/1/012056]
5. Cumagun CJR, Moosavi MR (2015) Significance of Biocontrol Agents of Phytonematodes. Pp. 50-78. In: TH Askary, PRP Martinelli (eds.). Biocontrol Agents of Phytonematodes. CABI Publishing, Wallingford, UK. [DOI:10.1079/9781780643755.0050]
6. De Leij FAAM, Kerry BR (1991) The nematophagous fungus Verticillium chlamydosporium as a potential biological control agent for Meloidogyne arenaria. Revue de Nematologie 14:157-164.
7. Fatemy S, Saeidi-Naeini F, Alizadeh A (2005) In vitro screening of fungi for parasitism against sugar beet cyst nematode Hetrodera schachtii. Nematologia Mediterranea 33:185-190.
8. Gulsar Banu J, Iyer R, Gunasekaran M (2006) Mass multiplication and formulation of nematophagous fungus, Paecilomyces lilacinus. International Journal of Nematology 16:145-152.
9. Hadapad AB, Zebita CP (2006) Mass production, survival and evaluation of solid substrate inocula of Beauveria brongniartii (Saccardo) Petch against Holotrichia serrata (Coleoptera: Scarabaeidae). Communications in Agricultural and Applied Biological Scince 71:433-441.
10. Hernandez MA, Hidalgo-Díaz L (2008) KlamiC: Bionematicida agrícola producido a partir del hongo Pochonia chlamydosporia var. catenulata. Revista de Protección Vegetal 23:131-134.
11. Hussy RS, Barker K (1973) A comparison of methods collecting inocula of Meloidogyne spp., including a new technique. Plant Disease 57:1025-1028.
12. Isaac GS, El-Deriny MM, Taha RG (2021). Efficacy of Purpureocillium lilacinum AUMC 10149 as biocontrol agent against root-knot nematode Meloidogyne incognita infecting tomato plant. Brazilian Journal of Biology 84:e253451. [DOI:10.1590/1519-6984.253451] [PMID]
13. Jenkins WR (1964) A rapid centrifugal-flotataion technique for separating nematode from soil. Plant Disease 48:692-1964.
14. Karssen G, Wesemael W, Moens M (2013) Root-knot Nematodes. Pp. 73-109. In: RN Perry, M Moens (eds.). Plant Nematology. CABI Publishing, Wallingford, UK. [DOI:10.1079/9781780641515.0073]
15. Khan A, Williams KL, Nevalainen HKM (2006) Infection of plant-parasitic nematodes by Paecilomyces lilacinus and Monacrosporium lysipagum. Biological Control 51:659-678. [DOI:10.1007/s10526-005-4242-x]
16. Luambano ND, Manzanilla-López RH, Powers SJ, Wanhoji JW, Narla RD (2019) Screening of locally available organic materials as substrates for production of Pochonia chlamydosporia in Kenya. Biological Control 133:18-25. [DOI:10.1016/j.biocontrol.2019.03.001]
17. Moens M, Perry RN, Starr JL (2009) Meloidogyne Species - A Diverse Group of Novel and Important Plant Parasites. Pp.1-17. In: RN Perry, M Moens, JL Starr (eds.). Root-Knot Nematodes. CABI Publishing, Wallingford, UK. [DOI:10.1079/9781845934927.0001] [PMID] [PMCID]
18. Moosavi MR (2020) Efficacy of Microbial Biocontrol Agents in Integration with other Managing Methods against Phytonematodes. Pp. 229-258. In: RA Ansari, R Rizvi, I Mahmood (eds.). Management of Phytonematodes-Recent Advances and Future Challenges. Springer, Singapore. [DOI:10.1007/978-981-15-4087-5_10]
19. Moosavi MR, Askary TH (2015) Nematophagous Fungi Commercialization. Pp. 187-202. In: TH Askary, PRP Martinelli (eds.). Biocontrol Agents of Phytonematodes. CABI Publishing, Wallingford, UK. [DOI:10.1079/9781780643755.0187]
20. Moosavi MR, Ghani M (2019) The optimal concentrations of Purpureocillium lilacinum and jasmonic acid in controlling Meloidogyne javanica on tomato. Archives of Phytopatology and Plant Protection 52:582-600. [DOI:10.1080/03235408.2018.1557375]
21. Moosavi MR, Minassian V (2021) Microbial Biopecticides - Opportunities and Challenges. Pp.535-550. In: J Karimi, H Madadi (eds.). Biological Control of Insect Pests in Iran, A Review of Fundamental and Applied Aspects. Springer, Cham, Switzerland. [DOI:10.1007/978-3-030-63990-7_14]
22. Moosavi MR, Zare R (2020) Fungi as Biological Control Agents of Plant-Parasitic Nematodes. Pp. 333-384. In: JM Merillon, KG Ramawat (eds.) Plant Defence: Biological Control. Progress in Biological Control 22. Springer, Cham. [DOI:10.1007/978-3-030-51034-3_14]
23. Nico AI, Jimenz RM, Castillo P (2004) Control of root knot nematodes by composted agroindustrial wastes in potting mixtures. Crop Protection 23:581-587. [DOI:10.1016/j.cropro.2003.11.005]
24. Nicol JM, Turner SJ, Coyne DL, den Nijs L, Hockland S Maafi T (2011) Current Nematode Threats to World Agriculture. Pp. 21-43. In: JT Jones, G Gheysen, C Fenoll (eds.). Genomics and Molecular Genetics of Plant Nematode Interactions. Springer, Dordrecht, the Netherlands. [DOI:10.1007/978-94-007-0434-3_2]
25. Perry RN (2002) Hatching. Pp.147-169. In: LD Lee (ed.). the Biology of Nematodes, Taylor and Francis, London. [DOI:10.1201/b12614-7]
26. Prabhu S, Kumar S, Subramanian S (2008) Mass production and commercial formulation of Paecilomyces lilacinus. Indian Journal of Nematology 38:131-133.
27. Sahayaraj K, Namasivayam SKR (2008) Mass production of entomopathogenic fungi using agricultural products and by products. African Journal of Biotechnology 7:1907-1910. [DOI:10.5897/AJB07.778]
28. Schisler DA, Jackson MA, Bothast RJ (1991) Influence of nutrition during conidiation of Colletotrichum truncatum on conidial germination and efficacy in inciting disease in Sesbania exaltata. Phytopathology 81:458-461.
https://doi.org/10.1094/Phyto-81-587 [DOI:10.1094/Phyto-81-458]
29. Sikora RA, Fernandez E (2005) Nematode Parasites of Vegetables. Pp. 319-392. In: M Luc, RA Sikora, J Bridge (eds.). Plant Parasitic Nematodes in Subtropical and Tropical Agriculture. CABI Publishing, Wallingford, UK. [DOI:10.1079/9780851997278.0319]
30. Silva SD, Carneiro SA, RAMDG, Faria M, Souza DA, Monnerat RG, Lopez RB (2017) Evaluation of Pochonia chlamydosporia and Purpureocillium lilacinum for suppression of Meloidogyne enterolobii on tomato and banana. Journal of Nematology 49:77-85. [DOI:10.21307/jofnem-2017-047] [PMID] [PMCID]
31. Singh S, Pandey RK, Goswami BK (2013) Bio-control activity of Purpureocillium lilacinum strains in managing root-knot disease of tomato caused by Meloidogyne incognita. Biological control Scince and Technology 23:1469-1489. [DOI:10.1080/09583157.2013.840770]
32. Sokhandani Z, Moosavi SMR, Basirnia T (2016) Optimum level s of Trichoderma longibrachiatum concentration and cadusafos dose in controlling Meloidogyne javanica on zucchini plants. Journal of Nematology 48:54-63. [DOI:10.21307/jofnem-2017-009] [PMID] [PMCID]
33. Verma AC, Singh HK, Khan A (2004) Evaluation of substrates for mass multiplication of Paecilomyces lilacinus. Annals of Plant Protection Sciences 12:459-460.
34. Yang F, Abdelnabby H, Xiao Y (2015) The role of a phospholipase (PLD) in virulence of Purpureocillium lilacinum (Paecilomyces lilacinum). Microbial Pathogenesis 85:11-20. [DOI:10.1016/j.micpath.2015.05.008] [PMID]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
