جلد 9، شماره 2 - ( 6-1399 )                   جلد 9 شماره 2 صفحات 28-36 | برگشت به فهرست نسخه ها

XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Rahimi F, Rahmnapour S, Rezaee S, Larijani K. Identification of growth inhibitor of Sclerotinia sclerotiorum in Indian mustard leaf. pps. 2020; 9 (2) :28-36
URL: http://yujs.yu.ac.ir/pps/article-1-293-fa.html
رحیمی فاطمه، رحمانپور سیامک، رضائی سعید، لاریجانی کامبیز. شناسایی بازدارنده رشد Sclerotinia sclerotiorum در برگ خردل هندی. دانش بیماری شناسی گیاهی. 1399; 9 (2) :28-36

URL: http://yujs.yu.ac.ir/pps/article-1-293-fa.html


گروه گیاه پزشکی، دانشگاه ولی عصر (عج)، رفسنجان ، faterahimi@gmail.com
چکیده:   (176 مشاهده)
رحیمی ف، رحمانپور س، رضائی س، لاریجانی ک (1399) شناسایی بازدارنده رشد  sclerotiorumSclerotinia  در برگ خردل هندی. دانش بیماری‌شناسی گیاهی
9(2):36-28.      
DOI:10.2982/PPS.9.2.28..
مقدمه: قارچ   sclerotiorumSclerotiniaعامل پوسیدگی سفید قسمت‌های هوایی دامنه وسیعی از گیاهان است. هدف از این پژوهش، مقایسه واکنش بین بافت زنده برگ‌های خردل هندی بر رشد این قارچ، در شرایط روزنه‌های باز و بسته بود. مواد و روش‌ها: جدایه خالصی از قارچ به روش نوک ریسه روی محیط آب آگار تهیه گردید. آزمایش در قالب طرح کاملا تصادفی با چهار تیمار انجام شد. تشکیل ترکیب‌های بازدارنده رشد قارچ در بافت برگ همه تیمارها با دستگاه GC-MS بررسی شد.
یافته‌ها: تجزیه واریانس داده‌های آزمایش نشان داد که قطر پرگنه قارچ در تیمار با روزنه‌های باز برگ به طور معنی­داری کمتر از سایرین است.  کروماتوگرافی گازی،1-پروپن­3-ایزوتیوسیانات، را به­‌ عنوان ترکیب فرار بازدارنده رشد قارچ در این تیمار شناسایی کرد. نتیجه‌گیری: تولید این ترکیب فرار آلیل ایزوتیوسیاناتی در برگ خردل هندی مانع از رشد قارچ sclerotiorumSمی‌شود.
 
متن کامل [PDF 541 kb]   (63 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: تخصصي

فهرست منابع
1. Ahuja I, De Vos R C, Rohloff J, (2016) Arabidopsis myrosinases link the glucosinolate-myrosinase system and the cuticle. Scientific Reports 66:1-14. [DOI:10.1038/srep38990] [PMID] [PMCID]
2. Brader G Mikkelsen, M D, Halkier B A, Tapio Palva E (2006) Altering glucosinolate profiles modulates disease resistance in plants. The Plant Journal 46:758-767. [DOI:10.1111/j.1365-313X.2006.02743.x] [PMID]
3. Brown P D, Morra M J (1996) Hydrolysis products of glucosinolates in Brassica napus tissues as inhibitors of seed germination. Plant and Soil 181:307-316. [DOI:10.1007/BF00012065]
4. Brown P D, Morra M J, McCaffrey J P, Auld D L, Williams L (1991) Allelochemicals produced during glucosinolate degradation in soil. Journal of Chemical Ecology 17:2021-2034. [DOI:10.1007/BF00992585] [PMID]
5. Brown P D, Tokuhisa J G, Reichelt M, Gershenzon J (2003) Variation of glucosinolate accumulation among different organs and developmental stages of Arabidopsis thaliana. Phytochemistry 62:471-481. [DOI:10.1016/S0031-9422(02)00549-6]
6. Cessna S G, Sears V E, Dickman M B, Low P S (2000) Oxalic acid, a pathogenicity factor for Sclerotinia sclerotiorum, suppresses the oxidative burst of the host plant. The Plant Cell 12:2191-2199. https://doi.org/10.2307/3871114 [DOI:10.1105/tpc.12.11.2191] [PMID] [PMCID]
7. Dixon G R (2007) Vegetable Brassicas and Related Crucifers (No. 14). CABI, 327p. [DOI:10.1079/9780851993959.0000]
8. Fahey J W, Zalcmann A T, Talalay P (2001) The chemical diversity and distribution of glucosinolates and isothiocyanates among plants. Phytochemistry 56:5-51. [DOI:10.1016/S0031-9422(00)00316-2]
9. Guimaraes R L, Stotz H U (2004) Oxalate production by Sclerotinia sclerotiorum deregulates guard cells during infection. Plant Physiology 136:3703-3711. [DOI:10.1104/pp.104.049650] [PMID] [PMCID]
10. Hegedus D D, Rimmer S R (2005) Sclerotinia sclerotiorum: when "to be or not to be" a pathogen? FEMS Microbiology Letters 251:177-84 [DOI:10.1016/j.femsle.2005.07.040] [PMID]
11. Hegedus D D, Gerbrandt K, Coutu C (2016) The eukaryotic protein kinase superfamily of the necrotrophic fungal plant pathogen, Sclerotinia sclerotiorum. Molecular Plant Pathology 17:634-647. [DOI:10.1111/mpp.12321] [PMID] [PMCID]
12. Hossain M S, Ye W, Hossain M A Okuma E, Uraji M, Nakamura Y, Murata, Y (2013) Glucosinolate degradation products, isothiocyanates, nitriles, and thiocyanates, induce stomatal closure accompanied by peroxidase-mediated reactive oxygen species production in Arabidopsis thaliana. Bioscience, biotechnology, and biochemistry 120928. [DOI:10.1271/bbb.120928] [PMID]
13. Khokon M A R, Jahan M S (2011) Allyl isothiocyanate (AITC) induces stomatal closure in Arabidopsis. Plant, Cell & Environment 34:1900-1906. [DOI:10.1111/j.1365-3040.2011.02385.x] [PMID]
14. Rahmanpour S, Backhouse D, Nonhebel H M (2008) Studies on the role of the glucosinolate-myrosinase system resistance of oilseed rape to Sclerotinia sclerotiorum, Ph.D. Thesis, University of New England, Australia.
15. Rahmanpour S, Backhouse D, Nonhebel H M (2010) Reaction of glucosinolate-myrosinase defence system in Brassica plants to pathogenicity factor of Sclerotinia sclerotiorum. European Journal of Plant Pathology 128:429-433. [DOI:10.1007/s10658-010-9685-y]
16. Redovnikovic I R, Glivetic T, Vorkapic-Furac J (2008) Glucosinolates and their potential role in the ant. Periodical Biologorum 110:297-309.
17. Rollins J A, Dickman M B (2001) pH signaling in Sclerotinia sclerotiorum: identification of a pacC/RIM1 homolog. Applied and Environmental Microbiology 67:75-81. [DOI:10.1128/AEM.67.1.75-81.2001] [PMID] [PMCID]
18. Stotz, H U, Sawada Y, Shimada Y, Hirai, M Y, Sasaki E, Krischke M, Kamiya Y (2011) Role of camalexin, indole glucosinolates, and side-chain modification of glucosinolate-derived isothiocyanates in defense of Arabidopsis against Sclerotinia sclerotiorum. The Plant Journal 67:81-93. [DOI:10.1111/j.1365-313X.2011.04578.x] [PMID]
19. Tholl D, Boland W, Hansel A, Loreto F, Rose U S R, Schnitzler J (2006) Practical approaches to plant volatile analysis. The Plant Journal 45:540-560. [DOI:10.1111/j.1365-313X.2005.02612.x] [PMID]
20. Truman W M, Bennett M H, Trumbull C G, Grant M R (2010) Arabidopsis auxin mutants are compromised in systemic acquired resistance and exhibit aberrant accumulation of various indolic compounds. Plant Physiology 152:1562-1573. [DOI:10.1104/pp.109.152173] [PMID] [PMCID]
21. Warmington R, Clarkson J P (2016) Volatiles from biofumigant plants has a direct effect on carpogenic germination of sclerotia and mycelial growth of Sclerotinia sclerotiorum. Plant and Soil 401:213-229. [DOI:10.1007/s11104-015-2742-8]
22. Williams B, Kabbage M, Kim H J, Britt R, Dickman M B (2011) Tipping the balance sclerotinia sclerotiorum secreted oxalic acid suppresses host defenses by manipulation of the host redox environment. PLoS Pathogens e1002107 [DOI:10.1371/journal.ppat.1002107] [PMID] [PMCID]
23. Wittstock U, Halkier B A (2002) Glucosinolate research in the Arabidopsis era. Trends in Plant Science 7:263-270. [DOI:10.1016/S1360-1385(02)02273-2]
24. Xu L, Li G, Jiang D, Chen W (2018) Sclerotinia sclerotiorum: an evaluation of virulence theories. Annual Review of Phytopathology 56:311-338. [DOI:10.1146/annurev-phyto-080417-050052] [PMID]
25. Yoruk R, Marshall M R (2003) A survey on the potential mode of inhibition for oxalic acid on polyphenol oxidase. Journal of Food Science 68:2479-2485. [DOI:10.1111/j.1365-2621.2003.tb07049.x]
26. Szűcs Z, Plaszkó T, Cziáky Z, Kiss-Szikszai A, Emri T, Bertóti R, Gonda S (2018). Endophytic fungi from the roots of horseradish (Armoracia rusticana) and their interactions with the defensive metabolites of the glucosinolate-myrosinase-isothiocyanate system. BMC Plant Biology 18:85. [DOI:10.1186/s12870-018-1295-4] [PMID] [PMCID]

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA

ارسال پیام به نویسنده مسئول


کلیه حقوق این وب سایت متعلق به سامانه نشریات دانشگاه یاسوج دانش بیماری شناسی گیاهی می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2021 All Rights Reserved | University of Yasouj Journals System Plant Pathology Science

Designed & Developed by : Yektaweb