(بهار و تابستان)                   برگشت به فهرست مقالات | برگشت به فهرست نسخه ها

XML English Abstract Print


مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان اردبیل (مغان)، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، مغان ، r.fakhari68@gmail.com
چکیده:   (28 مشاهده)

هدف: این آزمایش با هدف، ارزیابی شایستگی نسبی و شاخص‌های جوانه‌زنی بذر بیوتیپ‌های حساس و مقاوم خردل وحشی به علف‌کش تری‌بنورون‌متیل در شرایط مختلف دمایی و غلظت‌های اسید جیبرلیک می‌باشد.
روش پژوهش: این آزمایش در آزمایشگاه دانشگاه محقق اردبیلی در سال 1402 به صورت فاکتوریل سه عاملی، در قالب طرح کاملاً تصادفی با ۳ تکرار انجام شد. عامل اول در 2 سطح (بذر بیوتیپ حساس و مقاوم به تری‌بنورون‌متیل، عامل دوم چهار سطح غلظت اسیدجیبرلیک (500، 1000، 1500 و 2000 میلی‌گرم در لیتر) و عامل سوم در 2 سطح دمایی 15/20 و 10/15 (روز و شب) درجه سلسیوس بود. در این آزمایش درصد جوانه‌زنی، سرعت و یکنواختی جوانه‌زنی، مقدار جذب آب بذر و شاخص بنیه گیاهچه بررسی شد.
یافته‌ها: درصد جوانه‌زنی و یکنواختی جوانه‌زنی خردل وحشی حساس بالاتر بود. برهمکنش دما × بیوتیپ و دما × غلظت اسیدجیبرلیک بر مقدار جذب آب معنی‌دار بود. سرعت جذب آب بوسیله بذر نیز در شرایط دمایی 15-10 درجه سلسیوس، بیشتر از شرایط دمای 20-15 درجه سلسیوس (روز و شب) بود. در خردل وحشی حساس سرعت جوانه‌زنی 8/1 برابر و بنیه گیاهچه 38 درصد بیشتر از خردل وحشی مقاوم بود.
نتیجه‌گیری: این یافته‌ها نه‌تنها به درک بهتر سازوکار‌های مقاومت کمک می‌کند و نشان می‌دهد که مقاومت به علف‌کش، اگرچه یک مزیت است، اما در بلندمدت می‌تواند به یک نقطه ضعف تبدیل شود. کشاورزان می‌توانند با تأخیر در کاشت گندم (به شرط عدم کاهش عملکرد گندم)، شرایط دمایی نامطلوب برای جوانه‌زنی علف‌هرز مقاوم را ایجاد کنند. خردل وحشی مقاوم جذب آب کندتری دارد و با مدیریت آبیاری می‌توان جوانه‌زنی علف‌هرز را کاهش داد. همچنین از آنجا که جوانه‌زنی خردل وحشی مقاوم در دمای پایین‌تر کندتر است، می‌توان با پایش دما، زمان مناسب برای مبارزه مکانیکی یا استفاده از علف‌کش را پیش‌بینی کرد.
جنبه‌های نوآوری:

  • اثر دما و اسیدجیبرلیک در جوانه‌زنی و رشد گیاهچه‌های بیوتیپ خردل وحشی حساس و مقاوم به علفکش بطور همزمان بررسی شد.
  • هزینه شایستگی در بیوتیپ‌های مقاوم به علفکش ارزیابی شد.
  • تاثیر متفاوت عوامل موثر بر رشد و جوانه‌زنی گیاه در دو بیوتیپ خردل وحشی بررسی شد.
متن کامل [PDF 489 kb]   (8 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: فیزیولوژی بذر
دریافت: 1404/1/26 | ویرایش نهایی: 1404/5/15 | پذیرش: 1404/6/4

فهرست منابع
1. Abbas-Dokht, H. (2003). Ecophysiological study of competition between Amaranthus retroflexus L. and soybean (Glycine max L.) [Unpublished doctoral dissertation]. University of Tehran. (In Persian)
2. Abdul-Baki, A. A., & Anderson, J. D. (1973). Vigor determination in soybean seed by multiple criteria. Crop Science, 13(6), 630-633. [DOI:10.2135/cropsci1973.0011183X001300060013x]
3. Aghajani, Z., Zand, E., Baghestani, M., & Mirhadi, M. (2009). Resistance of wild oat (Avena ludoviciana Durieu) populations to iodosulfuron+ mezosulfuron herbicide. Iranian Journal of Weed Science, 6, 79-93. (In Persian)
4. Alipoor, Z., & Mahmodi, S. (2015). Effect of different temperature on germination properties of fennel (Foeniculum vulgare), cannabis (Cannabis sativa) and sesame (Sesamus indicum). Iranian Journal of Seed Research, 2(1), 37-51. (In Persian) [DOI:10.29252/yujs.2.1.37]
5. Atkin, R. K. (1973). Mechanisms regulating the root/shoot ratio. Biological Journal of the Linnean Society, 5(2), 171-175.
6. Baskin, C. C. & Baskin, J. M. (1998). Seeds: Ecology, biogeography, and evolution of dormancy and germination. Academic Press. [DOI:10.1016/B978-0-12-080260-9.X5000-3]
7. Fazeli Kakhaki, F., Nezami, A., Parsa, M., & Kafi, M. (2015). Evaluation of germination indices and seedling growth in sesame ecotypes (Sesamum indicum L.) under salinity conditions. Environmental Stresses in Crop Sciences, 7(2), 217-232. (In Persian) [DOI:10.22077/escs.2015.180]
8. Galindez, G., Seal, C. E., Daws, M. I., Lindow, L., Ortega-Baes, P., & Pritchard, H. W. (2016). Alternative temperature combined with darkness resets base temperature for germination (Tb) in photoblastic seeds of Lippia and Aloysia (Verbenaceae). Plant Biology, 19, 41-45. [DOI:10.1111/plb.12449] [PMID]
9. Greenwood, D. J. (1983). Quantitative theory and the control of soil fertility. New Phytologist, 94(1), 1-18. [DOI:10.1111/j.1469-8137.1983.tb02715.x]
10. Gregory, P. J., Shepherd, K. D., & Cooper, P. J. (1984). Effects of fertilizer on root growth and water use of barley in Northern Syria. The Journal of Agricultural Science, 103(2), 429-438. [DOI:10.1017/S0021859600047407]
11. Hajati, M., Ayenehband, A., & Mahdavi Damghani, M. (2017). Evaluation of the response of wild mustard (Sinapis arvensis) populations in Golestan province to tribenuron-methyl herbicide. Paper presented at the 7th Iranian Weed Science Congress, University of Tehran, Tehran, Iran. (In Persian)
12. Hamzei, J., Seyedi, M., & Babaei, M. (2016). Competitive ability of lentil (Lens culinaris L.) cultivars to weed interference under rain-fed conditions. Journal of Agroecology, 8(1), 82-94. (In Persian) [DOI:10.22067/jag.v8i1.34606]
13. Heap, I. (2024). The international survey of herbicide-resistant weeds. http://www.weedscience.com
14. Ismail, B. S., Chuah, T. S., Salmijah, S., Teng, Y. T., & Schumacher, R. W. (2002). Germination and seedling emergence of glyphosate‐resistant and susceptible biotypes of goosegrass (Eleusine indica [L.] Gaertn.). Weed Biology and Management, 2(4), 177-185. [DOI:10.1046/j.1445-6664.2002.00066.x]
15. Kafi, M., Nezami, A., Hosseini, H., & Masoumi, A. (2005). Physiological effects of drought stress induced by polyethylene glycol on lentil cultivars. Journal of Iranian Agricultural Research, 3(1), 69-79. (In Persian)
16. Keshtkar, E., Abdolshahi, R., Sasanfar, H., Zand, E., Beffa, R., Dayan, F. E., & Kudsk, P. (2019). Assessing fitness costs from a herbicide-resistance management perspective: A review and insight. Weed Science, 67(2), 137-148. [DOI:10.1017/wsc.2018.63]
17. Khan, M. A., & Gulzar, S. (2003). Germination responses of Sporobolus ioclados: A saline desert grass. Journal of Arid Environments, 53(3), 387-394. [DOI:10.1006/jare.2002.1045]
18. Khan, M. L. (2004). Effects of seed mass on seedling success in Artocarpus heterophyllus L., a tropical tree species of north-east India. Acta Oecologica, 25(1-2), 103-110. [DOI:10.1016/j.actao.2003.11.007]
19. Lehnhoff, E. A., Keith, B. K., Dyer, W. E., & Menalled, F. D. (2013). Impact of biotic and abiotic stresses on the competitive ability of multiple herbicide-resistant wild oats (Avena fatua). PLOS ONE, 8(5), e64478. [DOI:10.1371/journal.pone.0064478] [PMID] []
20. Mavi, K., Powell, A. A., & Matthews, S. (2016). The rate of radicle emergence and leakage of electrolytes provide quick predictions of the percentage of normal seedlings in standard germination tests of radish (Raphanus sativus). Seed Science and Technology, 44(2), 393-409. [DOI:10.15258/sst.2016.44.2.12]
21. Najafi, F., Bannayan, M., Tabrizi, L., & Rastgoo, M. (2006). Seed germination and dormancy breaking techniques for Ferula gummosa and Teucrium polium. Journal of Arid Environments, 64(3), 542-547. [DOI:10.1016/j.jaridenv.2005.06.009]
22. Park, K. W., Mallory-Smith, C. A., Ball, D. A., & Mueller-Warrant, G. W. (2004). Ecological fitness of acetolactate synthase inhibitor-resistant and-susceptible downy brome (Bromus tectorum) biotypes. Weed Science, 52(5), 768-773. [DOI:10.1614/WS-04-081R]
23. Pawar, R. K. (2009). Weed management. Oxford Book Company.
24. Powles, S. B., & Yu, Q. (2010). Evolution in action: Plants resistant to herbicides. Annual Review of Plant Biology, 61, 317-347. [DOI:10.1146/annurev-arplant-042809-112119] [PMID]
25. Rodrigues, P. M. S., Schaefer, C. E. G. R., Silva, J. D. O., Junior, W. G. F., Santos, R. M. D., & Neri, A. V. (2016). The influence of soil on vegetation structure and plant diversity in different tropical savannic and forest habitats. Journal of Plant Ecology, 11(2), 226-236. [DOI:10.1093/jpe/rtw135]
26. Rouhi, H. R., Aboutalebian, M. A., Moosavi, S. A., Karimi, F. A., Karimi, F., Saman, M., & Samadi, M. (2012). Change in several antioxidant enzymes activity of Berseem clover (Trifolium alexandrinum L.) by priming. International Journal of AgriScience, 2(3), 237-243.
27. Soltani, A., & Galeshi, S. (2002). Importance of rapid canopy closure for wheat production in a temperate sub-humid environment: Experimentation and simulation. Field Crops Research, 77(1), 17-30. [DOI:10.1016/S0378-4290(02)00045-X]
28. Soltani, A., Galeshi, S., Zenali, E., & Latifi, N. (2001). Genetic variation for and interrelationships among seed vigor traits in wheat from the Caspian Sea coast of Iran. Seed Science and Technology, 29, 653-662.
29. Soltani, A., Galeshi, S., Zenali, E., & Latifi, N. (2002). Germination seed reserve utilization and growth of chickpea as affected by salinity and seed size. Seed Science and Technology, 30, 51-60.
30. Verma, S., & Dubey, R. S. (2003). Lead toxicity induces lipid peroxidation and alters the activities of antioxidant enzymes in growing rice plants. Plant Science, 164(4), 645-655. [DOI:10.1016/S0168-9452(03)00022-0]
31. Vila-Aiub, M. M., Neve, P., & Powles, S. B. (2009). Fitness costs associated with evolved herbicide resistance alleles in plants. New Phytologist, 184(4), 751-767. [DOI:10.1111/j.1469-8137.2009.03055.x] [PMID]
32. Willenborg, C. J., Wildeman, J. C., Miller, A. K., Rossnagel, B. G., & Shirtliffe, S. J. (2005). Oat germination characteristics differ among genotypes, seed sizes, and osmotic potentials. Crop Science, 45(5), 2023-2029. [DOI:10.2135/cropsci2004.0722]
33. Zimdahl, R. L. (2018). Fundamentals of weed science (5th ed.). Academic Press. [DOI:10.1016/B978-0-12-811143-7.00023-8]

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA

ارسال پیام به نویسنده مسئول


بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.

کلیه حقوق این وب سایت متعلق به مجله پژوهشهای بذر ایران می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2025 CC BY-NC 4.0 | Iranian Journal of Seed Research

Designed & Developed by : Yektaweb

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.