جلد 11، شماره 2 - ( (بهار و تابستان) 1401 )                   جلد 11 شماره 2 صفحات 51-42 | برگشت به فهرست نسخه ها


XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Vakili-Ghartavol M, Arouiee H, Golmohammadzadeh S, Naseri M. (2022). Optimal methods for the preparation of fungal mycelium for examination with the scanning electron microscope. pps. 11(2), 42-51. doi:10.52547/pps.11.2.42
URL: http://yujs.yu.ac.ir/pps/article-1-387-fa.html
وکیلی قرطاول معصومه، آروئی حسین، گل محمدزاده شیوا، ناصری محبوبه. روشهای بهینه آماده‌سازی میسیلیوم قارچها برای مطالعه با میکروسکوپ الکترونی روبشی دانش بیماری شناسی گیاهی 1401; 11 (2) :51-42 10.52547/pps.11.2.42

URL: http://yujs.yu.ac.ir/pps/article-1-387-fa.html


گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد، مشهد ، aroiee@um.ac.ir
چکیده:   (644 مشاهده)
وکیلی قرطاول م، آروئی ح، گل محمدزاده ش، ناصری م (1401) روشهای بهینه آماده‌سازی میسیلیوم قارچها برای مطالعه با میکروسکوپ الکترونی روبشی. دانش بیماری‌شناسی گیاهی
 11(2):  51
-42.                             Doi: 10.2982/PPS.11.2.42     

 
مقدمه: قارچهای بیمارگرگیاهی با ایجاد فساد در محصولهای گیاهی و مسمومیت‌های غذایی تهدیدی جدی برای امنیت غذایی جهان محسوب می‌شوند. یکی از روشهای شناسایی قارچها مطالعه میسیلیوم آنها با میکروسکوپ الکترونی روبشی (SEM) است. برای گرفتن تصاویر میکروسکوپی با وضوح بالا و حفظ ویژگی‌های سطحی نمونه‌های میسیلیوم قارچها، آماده‌سازی نمونه‌ها یعنی روش آبگیری و خشک کردن آن‌ها بسیار مهم است. مواد و روش‌ها: تاثیر دو روش آبگیری و دو روش خشک کردن میسیلیوم دو قارچ Rhizoctonia solani و Rhizopus stolonifer برای مطالعه آنها با میکروسکوپ الکترونی روبشی در این پژوهش، مقایسه شدند. یافته‌ها: مشاهده‌های میکروسکوپی نشان دادند که در  R. stolonifer آبگیری با اتانول 100 درصد و خشک کردن و در R. solani در دمای اتاق و آبگیری با اتانول 50 درصد و روش انجماد نسبت به سایر روش‌ها تصویر صاف و با وضوح بالا تولید می‌کنند. نتیجه‌گیری: آبگیری میسلیوم قارچها با اتانول 50 تا 100 درصد و خشک کردن در دمای اتاق یا منجمد کردن آن، روشهای بهینه برای آمادهسازی آنها برای  مطالعه با SEM هستند و تصویر صاف و با وضوح بالا تولید میکنند و ویژگی‌های سطحی میسلیوم آنها حفظ شده و به خوبی قابل رویت است.

 
واژه‌های کلیدی: اتانول، Rhizoctonia، Rhizopus
متن کامل [PDF 795 kb]   (304 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: تخصصي
دریافت: 1401/5/30 | پذیرش: 1401/7/24

فهرست منابع
1. Ajayi Oyetunde O, Bradley C (2018) Rhizoctonia solani: taxonomy, population biology and management of rhizoctonia seedling disease of soybean. Plant Pathology 67:3-17. [DOI:10.1111/ppa.12733]
2. Ali EOM Shakil NA, Rana VS, Sarkar DJ, Majumder S, Kaushik P, Kumar J (2017) Antifungal activity of nano emulsions of neem and citronella oils against phytopathogenic fungi, Rhizoctonia solani and Sclerotium rolfsii. Industrial Crops and Products 108:379-387. [DOI:10.1016/j.indcrop.2017.06.061]
3. Beckett A, Read N, Porter R (1984) Variations in fungal spore dimensions in relation to preparatory techniques for light microscopy and scanning electron microscopy. Journal of Microscopy 136:87-95. [DOI:10.1111/j.1365-2818.1984.tb02548.x]
4. Berkeley MJ (1948). Observations, botanical and physiological, on the potato murrain: American Phytopathological Society. [DOI:10.1094/9780890545232] [PMCID]
5. Boyde A, Maconnachie E (1979) Volume changes during preparation of mouse embryonic tissue for scanning electron microscopy. Scanning 2:149-163. [DOI:10.1002/sca.4950020305]
6. Burt S (2004) Essential oils: their antibacterial properties and potential applications in foods-a review. International Journal of Food Microbiology 94:223-253. [DOI:10.1016/j.ijfoodmicro.2004.03.022] [PMID]
7. Collins SP, Pope RK, Scheetz RW, Ray RI, Wagner PA, Little BJ (1993) Advantages of environmental scanning electron microscopy in studies of microorganisms. Microscopy Research and Technique 25:398-405. [DOI:10.1002/jemt.1070250508] [PMID]
8. Crous PW, Hawksworth DL, Wingfield MJ (2015) Identifying and naming plant-pathogenic fungi: past, present, and future. Annual Review of Phytopathology 53:247-267. [DOI:10.1146/annurev-phyto-080614-120245] [PMID]
9. Ebrahimi M, Khosravi-Darani, K (2013) Essential oils as natural food preservatives: antimicrobial and antioxidant applications. Antimicrobials from Nature: Effective Control Agents for Drug Resistant Pathogens 1-14.
10. Harris SD, Read ND, Roberson RW, Shaw B, Seiler S, Plamann M, Momany M (2005) Polarisome meets spitzenkorper: microscopy, genetics, and genomics converge. Eukaryotic Cell 4:225-229. [DOI:10.1128/EC.4.2.225-229.2005] [PMID] [PMCID]
11. Hernandez-Lauzardo AN, Bautista-Baños S, Velazquez-Del Valle MG, Méndez-Montealvo M, Sánchez-Rivera M, Bello-Perez LA (2008) Antifungal effects of chitosan with different molecular weights on in vitro development of Rhizopus stolonifer (Ehrenb.: Fr.) Vuill. Carbohydrate Polymers 73:541-547. [DOI:10.1016/j.carbpol.2007.12.020] [PMID]
12. Liu K, Zhou X, Fu M (2017) Inhibiting effects of epsilon-poly-lysine (ε-PL) on Pencillium digitatum and its involved mechanism. Postharvest Biology and Technology 123:94-101. [DOI:10.1016/j.postharvbio.2016.08.015]
13. Pathan A, Bond J, Gaskin R (2010) Sample preparation for SEM of plant surfaces. Materials Today 12:32-43. [DOI:10.1016/S1369-7021(10)70143-7]
14. Pourmahdi A, Taheri P (2015) Genetic diversity of T hanatephorus cucumeris infecting tomato in Iran. Journal of Phytopathology 163:19-32. [DOI:10.1111/jph.12276]
15. Read N, Porter R, Beckett A (1983) A comparison of preparative techniques for the examination of the external morphology of fungal material with the scanning electron microscope. Canadian Journal of Botany 61:2059-2078. [DOI:10.1139/b83-223]
16. Vakili-Ghartavol M, Arouiee H, Golmohammadzadeh S, Naseri M (2022) Antifungal activity of Mentha× Piperita L. essential oil. Acta Scientiarum Polonorum-Hortorum Cultus 21:143-152. [DOI:10.24326/asphc.2022.1.12]
17. Venkatesh Babu G, Perumal P, Muthu S, Pichai S, Sankar Narayan K, Malairaj S (2018) Enhanced method for High Spatial Resolution surface imaging and analysis of fungal spores using Scanning Electron Microscopy. Scientific Reports 8:1-10. [DOI:10.1038/s41598-018-34629-8] [PMID] [PMCID]
18. Zhou W, Apkarian R, Wang Z L, Joy D. (2006). Fundamentals of scanning electron microscopy (SEM) Scanning microscopy for nanotechnology (pp. 1-40): Springer, New York, NY. [DOI:10.1007/978-0-387-39620-0_1]

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA

ارسال پیام به نویسنده مسئول


بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.

کلیه حقوق این وب سایت متعلق به دانشگاه یاسوج دانش بیماری شناسی گیاهی می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2023 CC BY-NC 4.0 | University of Yasouj Plant Pathology Science

Designed & Developed by : Yektaweb