جلد 13، شماره 1 - ( (پائیز و زمستان) 1402 )
جلد 13 شماره 1 صفحات 13-1 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Heidari F, Charehgani H, Abdollahi M, Adhami E. (2023). The effect of poultry and pigeon manures on pinto bean infection with the root-knot nematode Meloidogyne javanica. Plant Pathol. Sci.. 13(1), 1-13.
URL: http://yujs.yu.ac.ir/pps/article-1-443-fa.html
URL: http://yujs.yu.ac.ir/pps/article-1-443-fa.html
حیدری فاطمه، چاره گانی حبیب اله، عبداللهی محمد، ادهمی ابراهیم. تاثیر کودهای مرغی و کبوتر بر آلودگی لوبیا چیتی به نماتد غده ریشه Meloidogyne javanica دانش بیماری شناسی گیاهی 1402; 13 (1) :13-1
گروه گیاه‌پزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه یاسوج، یاسوج، ایران
چکیده: (172 مشاهده)
لوبیاچیتی با داشتن مقدار قابل توجهی پروتیین سهم مهمی در زندگی بشر دارد. نماتدهای غده ریشه (گونههای Meloidogyne) سالانه خسارت زیادی به مزرعههای حبوبات وارد می‌کنند. استفاده از کودهای شیمیایی منجر به عدم پایداری سیستم‌های زراعی و به خطر افتادن سلامت بشر شده است و استفاده از کودهای دامی می‌تواند جایگزین مناسبی برای آن باشد. تأثیر نسبت‌های مختلف کودهای کبوتری و مرغی بر گیاه لوبیا چیتی آلوده به نماتد M. javanica در شرایط گلخانه در پژوهش حاضر بررسی گردید. بدین منظور کود مرغی و کبوتری پوسیده شده به صورت جداگانه در سه نسبت وزن به وزن 1، 2 و 3 درصد در گلدان‌های 5/1 کیلوگرمی با خاک سترون مخلوط شد. بذور لوبیا چیتی در گلدان‌ها کشت و گیاهچه‌ها تا زمان پایان آزمایش در زمان مورد نیاز آبیاری و کوددهی شدند. گیاهچه‌ها در مرحله چهار برگی با 4000 تخم نماتد M. javanica مایه‌زنی شدند. گیاهان بعد از گذشت 60 روز برداشت و شاخص‌های رویشی گیاه و جمعیتی نماتد مورد ارزیابی قرار گرفت. آزمایش به صورت فاکتوریل، در قالب طرح کاملاً تصادفی در پنج تکرار انجام گرفت. نتایج نشان داد که استفاده از کود مرغی با نسبت 2 % وزن به وزن به عنوان بهترین تیمار آزمایش، باعث افزایش طول، وزن تر و خشک شاخساره و وزن تر ریشه در گیاهان آلوده به نماتد
M. javanica و همچنین باعث کاهش تعداد گال، کیسه تخم و تعداد تخم در سیستم ریشه، تعداد لارو سن دوم در خاک و فاکتور تولیدمثلی نسبت به گیاهان آلوده شاهد (بدون تیمار با کود) شد. یافتههای این پژوهش نشان داد که استفاده از کود مرغی در مقایسه با کود کبوتر تأثیر بهتری بر کاهش خسارت نماتد
M. javanica در گیاه لوبیا چیتی دارد.
M. javanica و همچنین باعث کاهش تعداد گال، کیسه تخم و تعداد تخم در سیستم ریشه، تعداد لارو سن دوم در خاک و فاکتور تولیدمثلی نسبت به گیاهان آلوده شاهد (بدون تیمار با کود) شد. یافتههای این پژوهش نشان داد که استفاده از کود مرغی در مقایسه با کود کبوتر تأثیر بهتری بر کاهش خسارت نماتد
M. javanica در گیاه لوبیا چیتی دارد.
فهرست منابع
1. Abd-Elgawad, M.M.M. (2021). Optimizing safe approaches to manage plant-parasitic nematodes. Plants, 10(9), 1911. [DOI:10.3390/plants10091911]
2. Akhtar, M. & Malik, A. (2000). Roles of organic soil amendments and soil organisms in the biological control of plant- parasitic nematodes: a review. Bio. resource Technol., 74(1), 35-47. [DOI:10.1016/S0960-8524(99)00154-6]
3. Anastasiadis, I.A., Giannakou, I.O., Prophetou-Athanasiadou, D.A. & Gowen, S.R. (2008). The combined effect of the application of a biocontrol agent Paecilomyces lilacinus, with various practices for the control of root-knot nematodes. Crop Prot., 27, 352-361. [DOI:10.1016/j.cropro.2007.06.008]
4. Bouyoucos, G.J. (1962). Hydrometer method improved for making particle size analyses of soils. Agron J, 54, 464-465. [DOI:10.2134/agronj1962.00021962005400050028x]
5. Broughton, W.J., Hernandez, G., Blair, M., Beebe, S., Gepts, P. & Vanderleyden, J. (2003). Beans (Phaseolus spp.)- model food legumes. Plant Soil, 252, 55-128. [DOI:10.1023/A:1024146710611]
6. Brzeski, M.W. & Dowe, A. (1969). Effect of pH on Tylenchorhynchus dubius (Nematoda, Tylenchidae). Nematologica, 15, 403-407. [DOI:10.1163/187529269X00489]
7. Bulluck, L.R., Barker, K.R. & Ristaino, J.B. (2002). Influences of organic and synthetic soil fertility amendments on nematode trophic groups and community dynamics under tomatoes. Appl. Soil Ecol., 21 (3), 233-250. [DOI:10.1016/S0929-1393(02)00089-6]
8. Byrd, D.W., Kirkpatrick, T. & Barker, K.R. (1983). An improved technique for clearing and staining plant tissues for detection of nematodes. J. Nematol., 15(1), 142-143.
9. El-Ashry, R.M. (2021). Application of animal manure and plant growth- promoting rhizobacteria as effective tools to control soil nematode population and increase crop yield in grapevine orchards. Egypt. J. Agronematol., 20, 34-52. [DOI:10.21608/ejaj.2021.141311]
10. El-Marzoky, A.M., Eldeeb, A.M., Mahrous, M.E. & El-Ashry, R.M. (2018). Influence of certain animal manures on nematode community in mandarin orchards citrus reticulata (Blanco) in Sharkia Governorate, Egypt. Egypt. J. Agronematol., 17, 143-156. [DOI:10.21608/ejaj.2018.53707]
11. Fourie, H., Ahuja, P., Lammers, J. & Daneel, M. (2016). Brassicacea-based management strategies as an alternative to combat nematode pests: A synopsis review article. Crop Protect., 80, 21-41. [DOI:10.1016/j.cropro.2015.10.026]
12. Gong, B., Bloszies, S., Li, X., Wei, M., Yang, F., Shi, Q. & Wang, X. (2013). Efficacy of garlic straw application against root-knot nematodes (Meloidogyne incognita) on tomato. Sci. Hortic., 161, 49 -57. [DOI:10.1016/j.scienta.2013.06.027]
13. Hirzell, J. & Walter, I. (2008). Availability of nitrogen, phosphorus and potassium from poultry litter and conventional fertilizers in a volcanic soil cultivated with silage corn. Chil. J. Agric. Res., 68, 264-273. [DOI:10.4067/S0718-58392008000300006]
14. Hussey, R.S. & Barker, K.R. (1973). Comparison of methods of collecting inoculate of Meloidogyne spp. including a new technique. Plant Dis. Rep., 57, 1025-1028.
15. Jackson, M.L. (1975). Soil chemical analysis: Advanced course. (11nd ed.). University of Wisconsin-Madison Library, WI, USA.
16. Jepson, S.B. (1987). Identification of root-knot nematodes Meloidogyne species. CABI Wallingford.
17. Jioshi, P.R. & Patel, H.R. (1995). Organic amendments in management of Meloidogyne javanica on groundnut. Indian J. of Nematol., 25, 76-78.
18. Kaplan, M. & Noe, J.P. (1995). Effects of chicken excrement amendments on Meloidogyne arenaria. J. Nematol., 25 (1), 71-77.
19. Kaplan, M., Noe, J.P. & Hartel, P.G. (1992). The role of microbes associated with chicken litter in the suppression of Meloidogyne arenaria. J. Nematol., 24, 522-527.
20. Karmani, B.K., Jiskani, M.M., Khaskheli, M.I. & Wagan, K.H. (2011). Influence of organic amendments on population and reproduction of root-knot nematode, Meloidogyne incognita in eggplants. Pak. J. Agric. Agric. Eng. Vet. Sci., 27(2), 150-159.
21. Khan, A., Shaukat, S.S., Qamar, F., Islam, S., Hakro, A.A. & Jaffry, A.F. (2001). Management of plant parasitic nematodes associated with chilli through organic soil amendments. Pak. J. Biol. Sci., 4, 417-418. [DOI:10.3923/pjbs.2001.417.418]
22. Lazarovits, G., Tenuta, M. & Conn, K.L. (2001). Organic amendments as a disease control strategy for soil borne disease of high-value agricultural crops. Australas. Plant. Pathol., 30, 11- 22. [DOI:10.1071/AP01009]
23. Lindsay, W.L. & Norvell, W.A. (1978). Development of a DTPA soil test for zinc, iron, manganese and copper. All Crop, Soil, Env. Sci. Soc., 42, 421-428. [DOI:10.2136/sssaj1978.03615995004200030009x]
24. Ma, J., Olin, S., Anthoni, P., Rabin, S.S., Bayer, A.D., Nyawira, S.S. & Arneth, A. (2022). Modeling symbiotic biological nitrogen fixation in grain legumes globally with LPJ-GUESS (v4.0, r10285). Geosci. Model. Dev., 15, 815-839. [DOI:10.5194/gmd-15-815-2022]
25. Maareg, M.F., Salem, F.M. & Ebieda, E.M. (2000). Effect of certain organic and inorganic amendments on Meloidogyne javanica in sandy soil. Egypt. J. Agronematol., 4, 82-94.
26. Mahran, A., Conn, K.L., Tenuta, M., Lazarovits, G. & Daayf, F. (2008). Effectiveness of liquid hog manure and acidification to kill Pratylenchus spp. in soil. J. Nematol., 40, 266-275.
27. Nico, A.I., Jimenez-Diaz, R.M. & Castilla, P. (2004). Control of root-knot nematodes by composed agro-industrial wastes in potting mixtures. Crop Protect., 23, 581-587. [DOI:10.1016/j.cropro.2003.11.005]
28. Olsen, S.R., Cole, C.V., Watanabe, F.S. & Dean, L.A. (1954). Estimation of available phosphorus in soils by extraction with sodium bicarbonate. Circular, 939, 19.
29. Orisajo, S.B., Afolami, S.O., Fademi, O. & Atungwu, J.J. (2008). Effects of poultry litter and carbofuran soil amendments on Meloidogyne incognita attacks on cacao. J. Appl. Biosci., 7, 214-221.
30. Ouedraogo, E., Mando, A., Brussaard, L. & Stroosnijder, L. (2007). Tillage and fertility management effects on soil organic matter and sorghum yield in semiarid West Africa. Soil Tillage Res., 94, 64-74. [DOI:10.1016/j.still.2006.07.001]
31. Pelletier, B.A., Pease, J. & Kenyon, D. (2001). Economic analysis of Virginia poultry litter transportation. Virginia Agricultural Experiment Station, Bulletin. Blacksburg, Virginia, USA
32. Poswal, K.A. & Faull, J.L. (1989). Commercial approaches to the use of biological control agents. In: J.M. Whipps, R.D. Lumsden (Eds.), Biotechnology of fungi for improving plant growth. (pp 75-259). Cambridge University Press, Cambridge, UK.
33. Rayne, N. & Aula, L. (2020). Livestock manure and the impacts on soil health: A review. Soil Syst., 4, 64. [DOI:10.3390/soilsystems4040064]
34. Renco, M., Daddabbo, T., Sasanelli, N. & Papajova, I. (2007). The effect of five composts of different origin on the survival and reproduction of Globodera rostochiensis. Nematology, 9, 537-543. [DOI:10.1163/156854107781487260]
35. Renco, M., Sasanelli, N., D′Addabbo, T. & Papajová, I. (2011). Soil nematode community changes associated with compost amendments. Nematology, 12, 681-692. [DOI:10.1163/138855409X12584413195491]
36. Rhoades, J.D. (1996). Salinity: electrical conductivity and total dissolved solids. In: R.L. Sparks (Ed.), Methods for soil analysis, Part 3: Chemical Methods. (pp 417-435). Soil Science Society of America, Madison, USA. [DOI:10.2136/sssabookser5.3.c14]
37. Richards, L.A. (1947). Diagnosis and improvement of saline and alkaline soils. ( Handbook No 60). Washington DC, USA. US Salinity Laboratory Staff, USDA. [DOI:10.1097/00010694-194711000-00013]
38. Rowell, D.L. (1993). Soil science: methods and applications. Longmans, Harlow, UK.
39. Sasser, J.N. & Carter, C.C. (1985). An advanced treatise on Meloidogyne, biology and control (Vol 1). North Carolina State University Graphics.
40. Sikder, M.M. & Vestergard, M. (2020). Impacts of root metabolites on soil nematodes. Front. Plant. Sci., 10, 1792. [DOI:10.3389/fpls.2019.01792]
41. Stirling, G.R. (2014). Biological control of plant-parasitic nematodes: Soil ecosystem management in sustainable agriculture. (2nd ed.). CAB International, Melksham, UK. [DOI:10.1079/9781780644158.0000]
42. Sundararaju, P., Mustaffa, M.M., Kumar, V., Cannayane, I. & Tanuja Priya, B. (2002). Effect of organic farming on plant-parasitic nematodes infesting banana cv. Karpuravalli. Curr. Nematol., 13, 39-43.
43. Taylor, A.L. (2003). Nematocides and nematicides - a history. Nematropica, 33, 225-232.
44. Taylor, A.L. & Sasser, J.N. (1978). Biology, identification, and control of root-knot nematodes (Meloidogyne species). North Carolina State University Graphics, Raleigh, USA.
45. Wagner, S.C. (2011). Biological Nitrogen Fixation. Nat. Educ. Knowl., 3, 15.
46. Westphal, A., Kücke, M. & Heuer, H. (2016). Soil amendment with digestate from bio-energy fermenters for mitigating damage to Beta vulgaris subspp. by Heterodera schachtii. Appl. Soil. Ecol., 99, 129-136. [DOI:10.1016/j.apsoil.2015.11.019]
47. Whitehead, A.G. & Hemming, J.R. (1965). A comparison of some quantitative methods of extracting small vermiform nematodes from soil. Ann. Appl. Biol., 55, 25-38. [DOI:10.1111/j.1744-7348.1965.tb07864.x]
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
