(پاییز و زمستان)
برگشت به فهرست مقالات |
برگشت به فهرست نسخه ها
دانشگاه یاسوج ، balouchi@yu.ac.ir
چکیده: (640 مشاهده)
چکیده مبسوط
مقدمه: بنیه ضعیف گیاهچه یکی از مشکلات اصلی در کشاورزی است که قابلیت جوانهزنی بذر و استقرار گیاهچه را کاهش داده و به‌طور مستقیم بر استقرار و عملکرد گیاه تأثیر می‌گذارد. استفاده از روش‌های پیش‌تیمار بذر با مواد شیمیایی و تنظیم‌کننده‌های رشد می‌تواند به‌عنوان راهکاری مؤثر در تقویت بنیه گیاهچه و بهبود صفات بیوشیمیایی و جوانهزنی بذر مورد استفاده قرار گیرد. در این مطالعه، تقویت بنیه گیاهچه‌های ذرت شیرین به کمک پیش‌تیمارهای اسید الاژیک، جیبرلین و نیترات پتاسیم تحت آزمون پیری تسریع شده بررسی شد.
مواد و روشها: این آزمایش در آزمایشگاه فناوری بذر دانشکده کشاورزی دانشگاه یاسوج در سال 1403 به‌صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی با دو عامل صورت گرفت. فاکتور اول پیری تسریع شده بذر در دو سطح (زوال و بدون زوال) و فاکتور دوم پیش‌تیمار بذر در 8 سطح (بدون پیش‌تیمار، پیش‌تیمار با آب مقطر، اسید الاژیک در دو سطح (25 و 100 میلی‌گرم بر لیتر)، جیبرلین در دو سطح (50 و 150 میلی‌گرم بر لیتر) و نیترات پتاسیم در دو سطح (15 و 60 میلی‌گرم بر لیتر) بود. در نهایت صفات بیوشیمیایی و جوانهزنی بذرها اندازه‌گیری شد.
یافته‌ها: نتایج این پژوهش نشان داد که زوال بذر به‌طور معنی‌داری منجر به کاهش خصوصیات جوانهزنی شامل درصد و سرعت جوانهزنی، طول ساقه‌چه، طول ریشه‌چه و شاخص طولی و وزنی بنیه گیاهچه شد. همچنین، شاخصهای بیوشیمیایی نظیر محتوای قندهای محلول و فعالیت آنزیم آلفا آمیلاز تحت تأثیر منفی زوال کاهش یافتند. از سوی دیگر، زوال بذر موجب افزایش محتوای پرولین، مالون دی‌آلدهید و فعالیت آنزیم پراکسیداز گردید که نشان‌دهنده تشدید تنش اکسیداتیو در شرایط زوال است. پیش‌تیمار بذرهای زوال‌یافته با اسید الاژیک، جیبرلین و نیترات پتاسیم تأثیر مثبتی در بهبود خصوصیات جوانهزنی و شاخصهای بیوشیمیایی داشت. به‌طور خاص، غلظت‌های 100 میلی‌گرم بر لیتر اسید الاژیک، 150 میلی‌گرم بر لیتر جیبرلین و 15 میلی‌گرم بر لیتر نیترات پتاسیم مؤثرترین پیش‌تیمارها بودند.
نتیجه‌گیری: نتایج این تحقیق نشان داد که پیش‌تیمار بذرهای زوال‌یافته ذرت شیرین رقم بیسین با اسید الاژیک، جیبرلین و نیترات پتاسیم موجب بهبود قابل توجه جوانهزنی و شاخصهای بیوشیمیایی شد. این تیمارها با کاهش اثرات منفی زوال بذر، به تقویت بنیه و استقرار گیاهچه‌ها کمک کردند. بنابراین، این پیش‌تیمارها می‌توانند به‌عنوان روشی مؤثر برای بهبود کیفیت بذرهای رقم بیسین در شرایط مختلف زراعی پیشنهاد شوند.
جنبه‌های نوآوری:
مقدمه: بنیه ضعیف گیاهچه یکی از مشکلات اصلی در کشاورزی است که قابلیت جوانهزنی بذر و استقرار گیاهچه را کاهش داده و به‌طور مستقیم بر استقرار و عملکرد گیاه تأثیر می‌گذارد. استفاده از روش‌های پیش‌تیمار بذر با مواد شیمیایی و تنظیم‌کننده‌های رشد می‌تواند به‌عنوان راهکاری مؤثر در تقویت بنیه گیاهچه و بهبود صفات بیوشیمیایی و جوانهزنی بذر مورد استفاده قرار گیرد. در این مطالعه، تقویت بنیه گیاهچه‌های ذرت شیرین به کمک پیش‌تیمارهای اسید الاژیک، جیبرلین و نیترات پتاسیم تحت آزمون پیری تسریع شده بررسی شد.
مواد و روشها: این آزمایش در آزمایشگاه فناوری بذر دانشکده کشاورزی دانشگاه یاسوج در سال 1403 به‌صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی با دو عامل صورت گرفت. فاکتور اول پیری تسریع شده بذر در دو سطح (زوال و بدون زوال) و فاکتور دوم پیش‌تیمار بذر در 8 سطح (بدون پیش‌تیمار، پیش‌تیمار با آب مقطر، اسید الاژیک در دو سطح (25 و 100 میلی‌گرم بر لیتر)، جیبرلین در دو سطح (50 و 150 میلی‌گرم بر لیتر) و نیترات پتاسیم در دو سطح (15 و 60 میلی‌گرم بر لیتر) بود. در نهایت صفات بیوشیمیایی و جوانهزنی بذرها اندازه‌گیری شد.
یافته‌ها: نتایج این پژوهش نشان داد که زوال بذر به‌طور معنی‌داری منجر به کاهش خصوصیات جوانهزنی شامل درصد و سرعت جوانهزنی، طول ساقه‌چه، طول ریشه‌چه و شاخص طولی و وزنی بنیه گیاهچه شد. همچنین، شاخصهای بیوشیمیایی نظیر محتوای قندهای محلول و فعالیت آنزیم آلفا آمیلاز تحت تأثیر منفی زوال کاهش یافتند. از سوی دیگر، زوال بذر موجب افزایش محتوای پرولین، مالون دی‌آلدهید و فعالیت آنزیم پراکسیداز گردید که نشان‌دهنده تشدید تنش اکسیداتیو در شرایط زوال است. پیش‌تیمار بذرهای زوال‌یافته با اسید الاژیک، جیبرلین و نیترات پتاسیم تأثیر مثبتی در بهبود خصوصیات جوانهزنی و شاخصهای بیوشیمیایی داشت. به‌طور خاص، غلظت‌های 100 میلی‌گرم بر لیتر اسید الاژیک، 150 میلی‌گرم بر لیتر جیبرلین و 15 میلی‌گرم بر لیتر نیترات پتاسیم مؤثرترین پیش‌تیمارها بودند.
نتیجه‌گیری: نتایج این تحقیق نشان داد که پیش‌تیمار بذرهای زوال‌یافته ذرت شیرین رقم بیسین با اسید الاژیک، جیبرلین و نیترات پتاسیم موجب بهبود قابل توجه جوانهزنی و شاخصهای بیوشیمیایی شد. این تیمارها با کاهش اثرات منفی زوال بذر، به تقویت بنیه و استقرار گیاهچه‌ها کمک کردند. بنابراین، این پیش‌تیمارها می‌توانند به‌عنوان روشی مؤثر برای بهبود کیفیت بذرهای رقم بیسین در شرایط مختلف زراعی پیشنهاد شوند.
جنبه‌های نوآوری:
1- زوال بذر منجر به افزایش شاخصهای بیوشیمیایی از قبیل محتوای پرولین بذر، فعالیت آنزیم پراکسیداز و محتوای مالون دی‌آلدهید بذر می‌گردد.
2- بنیه بذر ذرت شیرین رقم بیسین با پیش‌تیمار توسط اسید جیبرلین و الاژیک اسید بهبود می‌یابد.
3- اثر پیش‌تیمار قبل و بعد از زوال مصنوعی بر قابلیت جوانهزنی و بنیه بذر ذرت شیرین رقم بیسین مقایسه و بررسی شد.
3- اثر پیش‌تیمار قبل و بعد از زوال مصنوعی بر قابلیت جوانهزنی و بنیه بذر ذرت شیرین رقم بیسین مقایسه و بررسی شد.
نوع مطالعه: پژوهشي |
موضوع مقاله:
فیزیولوژی بذر
دریافت: 1403/11/7 | ویرایش نهایی: 1404/3/5 | پذیرش: 1403/12/25
دریافت: 1403/11/7 | ویرایش نهایی: 1404/3/5 | پذیرش: 1403/12/25
فهرست منابع
1. Abdul-Baki, A. and Anderson, J.D. 1973. Vigor determination in soybean seed by multiple criteria. Crop Science, 13(6): 630-633. [DOI:10.2135/cropsci1973.0011183X001300060013x]
2. Abu El Soud, W., Hegab, M.M., Abdelgavad, H., Zinta, G. and Asard, H. 2013. Ability of ellagic acid to alleviate osmotic stress on chickpea seedlings. Journal of Plant Physiology and Biochemistry, 71(1): 173-183. [DOI:10.1016/j.plaphy.2013.07.007] [PMID]
3. Afrouz, M., Sayyed, R.Z., Fazeli-Nasab, B., Piri, R., Almalki, W. H. and Fitriatin, B. N. 2023. Seed bio-priming with beneficial Trichoderma harzianum alleviates cold stress in maize. PeerJ, 11: e15644. [DOI:10.7717/peerj.15644] [PMID] []
4. Aghabarati, A. and Maralian, H. 2012. Acer cineracens boiss seed quality in relation to seed deterioration under accelerated ageing conditions. Natural Ecosystems of Iran, 2(2): 25-35.
5. Ahmadi, K., Shojaeeyan, A., Omidi, H., Amini Dehaghi, M. and Azadbakht, F. 2022. The effect of salicylic acid and potassium nitrate on germination characteristics, photosynthetic pigments and seedling proline seedlings of two safflower cultivars under salinity stress. Environmental Stresses in Crop Sciences, 15(1): 247-257. [In Persian]
6. Akbari, M., Baradaran firouzabadi, M., Amerian. M.R. and Farrokhi, N. 2020. Seed pretreatment with cinnamic acid positively affects germination, metabolite leakage, malondialdehyde content and heterotrophic growth of aging cowpea (Vigna unguiculata) seeds. Iranian Journal of Seed Research, 6(2): 163-176. [In Persian] [DOI:10.29252/yujs.6.2.163]
7. Akramian, M., Hosseini, A., Kazerooni, M. and Rezvani, M.J. 2007. Effect of seed osmopriming on germination and seedling development of fennel (Foeniculum vulgare mill.). Iranian Journal of Field Crop Science, 5(1): 37-46. [In Persian]
8. Arab, S., Baradaran, Firouzabadi, M., Gholami, A. and Haydari, M. 2022a. Effect of priming with Ellagic acid on the seed reserves mobilization and the growth of soybean seedlings under accelerated aging. Iranian Journal of Seed Science and Research, 9(3): 41-55. [In Persian] [DOI:10.61186/yujs.9.2.113]
9. Arab, S., Baradaran, Firouzabadi, M., Gholami, A. and Haydari, M. 2022b. the effect of seed treatment and foliar spray with ellagic acid on physiological traits of plants soybean under accelerated aging. Iranian Journal of Field Crops Research, 20(3): 305-317. [In Persian]
10. Arteca, R.N. 2013. Plant growth substances: principles and applications. Springer Science and Business Media, 332.
11. Baker, J.E. 1991. Purification and partial characterization of α-Amylase allozymes from the lesser grain borer, Rhyzopertha dominica. Insect Biochemistry, 21(3): 303- 311. [DOI:10.1016/0020-1790(91)90020-F]
12. Balouchi, H. and Ostadian Bidgoly, R. 2017. Effect of seed deterioration on physiological and biochemical traits of oil flax (Linum usitatissimum L. Norman var.) seed. Plant Productions, 40(2): 37-52. [In Persian]
13. Bayatian, N., Nikoumaram, S. and Ansari, O. 2021. The effect of drought stress and seed deterioration on cardinal temperatures of safflower (Carthamus tinctorius L.). Environmental Stresses and Crop Sciences, 14(1): 143-155. [In Persian]
14. Behboud, R., Moradi, A., Piri, R., Dedicova, B., Fazeli-Nasab, B. and Ghorbanpour, M. (2024). Sweet corn (Zea mays L.) seed performance enhanced under drought stress by chitosan and minerals coating. BMC Plant Biology, 24(1): 991. [DOI:10.1186/s12870-024-05704-2] [PMID] []
15. Bradford, M. M. 1976. A rapid and sensitive method of quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry, 72: 248-254. [DOI:10.1006/abio.1976.9999] [PMID]
16. Corbineau, F. 2024. The effects of storage conditions on seed deterioration and ageing: How to improve seed longevity. Seeds, 3(1): 56-75. [DOI:10.3390/seeds3010005]
17. Den, N., Bukhari. S.A. and Rathinasabapathi, B. 2022. Improvement of seed germination and early growth of sunflower under non-lethal heat stress via seed priming with potassium nitrate. Scientia Horticulturae, 18(3): 111-119. [DOI:10.2139/ssrn.4299830]
18. Evtyugin, D., Magina, S. and Evtuguin, D. 2020. Recent advances in the production and applications of ellagic acid and its derivatives. A Review. Journal of Molecules 25: 27-45. [DOI:10.3390/molecules25122745] [PMID] []
19. Fazeli-Nasab, B., Khajeh, H., Piri, R. and Moradian, Z. 2023. Effect of humic acid on germination characteristics of Lallemantia royleana and Cyamopsis tetragonoloba under salinity stress. Iranian Journal of Seed Research, 9(2): 51-62. [In Persian] [DOI:10.61186/yujs.9.2.51]
20. Ghanaei, p. 2019. The effect of seed deterioration on germination and seedling growth of corn. Journal of Seed Research, 8(4): 49-58. [In Persian]
21. Ghanbari, A. and Saeedipour, S. 2022. Effect of seed priming hormone on germination characteristics and seedling growth of Zea mays L. Iranian Journal of Seed Science and Research, 9(1): 39-49. [In Persian].
22. Govindaraj, M., P. Masilamani, V. Alex Albert, and M. Bhaskaran. 2017. Role of antioxidants in seed quality. A review Agricultural Revolution, 91(9): 810-830.
23. Hassanzadeh Kohl-Sofla, S. 2014. The effect of pretreatment on the growth and antioxidant enzyme activity of supersweet corn cultivar Basin under salt stress. Iranian Journal of Plant Ecophysiology Research, 33(1): 21-28. [In Persian]
24. Heath, R. L. and Packer, L. 1968. Photo peroxidation in isolated chloroplast. I. Kinetics and stoichiometry of fatty acid peroxidation. Archives of Biochemistry and Biophysics, 125(1): 189-198. [DOI:10.1016/0003-9861(68)90654-1] [PMID]
25. Hernández, J. A., Díaz-Vivancos, P., Acosta-Motos, J. R. and Barba-Espín, G. 2021. Potassium nitrate treatment is associated with modulation of seed water uptake, antioxidative metabolism, and phytohormone levels of pea seedlings. Seeds, 1(1): 5-15. [DOI:10.3390/seeds1010002]
26. Irigoyen J.J., D.W. Emerich and M. Sanchez-Diaz. 1992. Water stress induced changes in concentrations of proline and total soluble sugars in nodulated alfalfa (Medicago sativa) plants. Physiologia Plantarum, 84: 55-60. [DOI:10.1034/j.1399-3054.1992.840109.x]
27. ISTA, International Seed Testing Association. 2010. Seed Vigour. International rules for seed testing. Rules 2010. Chapter 15.
28. Jan, A.U., Hadi, F., Akbar, F. and Shah, A., 2019. Role of potassium, zinc and gibberellic acid in increasing drought stress tolerance in sunflower (helianthus annuus L.). Pakistan Journal of Botany, 51: 809-815. [DOI:10.30848/PJB2019-3(4)]
29. Kamaei, R., Kafi, M., Afshari, R. T., Shafaroudi, S. M. and Nabati, J. 2024. Physiological and molecular changes of onion (Allium cepa L.) seeds under different aging conditions. BMC Plant Biology, 24(1): 85. [DOI:10.1186/s12870-024-04773-7] [PMID] []
30. Kapilan, R. 2015. Accelerated aging declines the germination characteristics of the maize seeds. Scholars Academic Journal of Biosciences, 3(8): 708-711.
31. Kapoor, R., Arya, A., Siddiqui, M.A., Amir, A. and Kumar, H. 2010. Seed deterioration in chickpea (Cicer arietinum L.) under accelerated ageing. Asian Journal of Plant Science, 9(3): 158-162. [DOI:10.3923/ajps.2010.158.162]
32. Kar, M. and Mishra. D. 1976. Catalase, Peroxides and poly phenol oxides activities during rice leaf senescence. Plant Physiology, 57: 315-319. [DOI:10.1104/pp.57.2.315] [PMID] []
33. Kaya, C., Ashraf, M., Alyemeni, M.N., Corpas, F.J. and Ahmad, P. 2020. Salicylic acid-induced nitric oxide enhances arsenic toxicity tolerance in maize plants by upregulating the ascorbate-glutathione cycle and glyoxalase system. Journal of Hazardous Materials, 399: 123020. [DOI:10.1016/j.jhazmat.2020.123020] [PMID]
34. Khan, A., Nazar, S., Lang, I., Nawaz, H. and Hussain, M.A. 2017. Effect of ellagic acid on growth and physiology of canola (Brassica napus L.) under saline conditions. Journal of Plant Interaction, 12(1): 520-525. [DOI:10.1080/17429145.2017.1400122]
35. Kong, L., Huo, H. and Moa, P. 2015. Antioxidant response and related gene expression in aged oat seed. Frontiers Plant Science, 6: 1-9. [DOI:10.3389/fpls.2015.00158]
36. Kumuri, N., Kumar, P., Rai Bura, B. and singh, J. 2017. Effect of halo priming and hormonal priming on seed germination and seedling vigor in maize (Zea mays L.) seeds. Journal of Pharmacognosy Pyhtochemistry, 6(4): 27-30.
37. Lan, D., Yu, M., Wang, H. and Zhang, B. 2024. Competitive degradation process based monitoring of steer-by-wire system under unknown degradation features. Measurement Science and Technology, 36(1): 016216. [DOI:10.1088/1361-6501/ad8fc0]
38. Lotfi, M., Oveisi, M., Rahimian Mashhadi, H., Pourmorad Kaleibar, B. and Naeimi, M. H. 2020. Effect of chilling time and gibberellic acid treatments on germination thermal parameters of Eryngium caeruleum. Iranian Journal of Field Crop Science, 51(1): 91-100.
39. Maguire, J.D. 1968. Seed dormancy, germination and seedling vigor of some Kentucky bluegrass (Poa pratensis L.) varieties as affected by environmental and endogenous factors. Dissertation. Oregon State University.
40. Mahajan, G., Sarlach, R.S., Japinder, S., and Gill, M.S. 2011. Seed priming effects on germination, growth and yield of dry direct -seeded rice. Journal of Crop Improvement, 25(4): 409-417. [DOI:10.1080/15427528.2011.576381]
41. Malek, M., Ghaderifar, F., Torabi, B. and Sadeghipour, H. 2019. Response of primed rapeseed (Brassica napus L) seeds to different temperatures. Journal of Plant Production Research, 26(2): 215-227. [In Persian]
42. Mansouri, A. and Omidi, H. 2022. Effect of priming and seed age on germination, photosynthetic pigments, and biochemical content of Quinoa seedling. Journal of Plant Process and Function, 11(50): 243-260. [In Persian]
43. Massarat, N., Siadat, A., Sharafizadeh, M. and Habibi, B. 2014. The effect of priming on germination and growth of maize hybrid SC704 in drought and salinity stress condition. Plant Ecophysiology, 5(15): 13-25. [In Persian]
44. Matsushima, K. I. and Sakagami, J. I. 2013. Effects of seed hydropriming on germination and seedling vigor during emergence of rice under different soil moisture conditions. American Journal of Plant Sciences, 4(8): 1584-1593. [DOI:10.4236/ajps.2013.48191]
45. Miller, T. and Chapman, S. J. 1978. Germination responses of three forage grasses to different concentration of six salts. Journal of Range Management, 31(2): 123-124. [DOI:10.2307/3897659]
46. Moori, S., Eisvand, H. R., Ismaili, A. and Sasani, S. 2018. Effects of seed preparation with gibberellic acid and brassinosteroid on germination indices and physiological traits after accelerated aging. Seed Science and Technology, 7(2): 183-193. [In Persian]
47. Muhei, S.H. 2018. Seed priming with phytohormones to improve germination under dormant and abiotic stress conditions. Advances in Crop Science and Technology, 6: 403-409. [DOI:10.4172/2329-8863.1000403]
48. Ocvirk, D., Špoljarević, M., Kristić, M., Hancock, J. T., Teklić, T. and Lisjak, M. 2021. The effects of seed priming with sodium hydrosulphide on drought tolerance of sunflower (Helianthus annuus L.) in germination and early growth. Annals of Applied Biology, 178: 400-413. [DOI:10.1111/aab.12658]
49. Paquine, R. and P. Lechasseur. 1979. Observations sur une methode dosage la libre dans les de plantes. Canadian Journal of Botany, 57: 1851-1854. [DOI:10.1139/b79-233]
50. Paravar, A., Maleki Farahani, S., Adetunji, A.E., Oveisi, M. and Piri, R. 2023. Effects of seed moisture content, temperature, and storage period on various physiological and biochemical parameters of Lallemantia iberica Fisch. & CA Mey. Acta Physiologiae Plantarum, 45(9): 1-15. [DOI:10.1007/s11738-023-03581-0]
51. Pari, L. and Sivasankari, R. 2008. Effect of ellagic acid on cyclosporine A-induced oxidative damage in the liver of rats. Fundamental and Clinical Pharmacology, 22: 395-401. [DOI:10.1111/j.1472-8206.2008.00609.x] [PMID]
52. Piri, R., Moradi, A. and Hoseini-Moghaddam, M. 2018. Effect of accelerated aging and seed priming on germination and some biochemical indices of cumin (Cuminum cyminum L.). Iranian Journal of Seed Science and Research, 5(1): 69-81. [In Persian] [DOI:10.22124/jms.2018.2901]
53. Piri, R., Moradi, A., Salehi, A. and Balouchi, H.R. 2021. Effect of seed biological pretreatments on germination and seedling growth of cumin (Cuminum cyminum L.) under drought stress. Iranian Journal of Seed Science and Technology, 9(4): 11-26. [In Persian] [DOI:10.22034/ijsst.2019.109182.1054]
54. Pirredda, M., Fañanás-Pueyo, I., Oñate-Sánchez, L. and Mira, S. 2023. Seed longevity and ageing: a review on physiological and genetic factors with an emphasis on hormonal regulation. Plants, 13(1): 41. [DOI:10.3390/plants13010041] [PMID] []
55. Rajjou, L., Lovigny, Y., Groot, S. P. C., Belghazi, M., Job, C. and Job, D. 2008. Proteome-wide characterization of seed aging in Arabidopsis: A comparison between artificial and natural aging protocols. Plant Physiology, 148(2): 620-641. [DOI:10.1104/pp.108.123141] [PMID] []
56. Rasheed, R., Ashraf, M.A., Hussain, I., Haider, M.Z., Kanwal, U. and Iqbal, M. 2014. Exogenous proline and glycine betaine mitigate cadmium stress in two genetically different spring wheat (Triticum aestivum L.) cultivars. Brazilian Journal of Botany, 37: 399-406. [DOI:10.1007/s40415-014-0089-7]
57. Rashidi, F., Bagheri, N., Jelodar, N. B. and Kelagar, A. D. 2023. Investigating seed priming by salicylic acid and gibberellin on early maturity, germination and yield components two canola genotypes. Crop Production, 16(1): 99-114. [In Persian]
58. Rastegar, Z., Sedghi M. and Khomari, S. 2011. Effects of accelerated aging on soybean seed germination indexes at laboratory conditions. Not Science Biology, 3: 126-129. [DOI:10.15835/nsb336075]
59. Revilla, P., Anibas, C.M. and Tracy, W.F. 2021. Sweet corn research around the world 2015-2020. Agronomy, 11(3): 534. [DOI:10.3390/agronomy11030534]
60. Rezai Sokht Abdani, R. and Ramezani, M. 2013. The effect of osmopriming on some germination characteristics of two-vein single cross 704 corn seeds. Iranian Seed Science and Technology Journal, 2(2): 135-146. [In Persian]
61. Rhaman, M. S., Imran, S., Rauf, F., Khatun, M., Baskin, C. C., Murata, Y. and Hasanuzzaman, M. 2020. Seed priming with phytohormones: an effective approach for the mitigation of abiotic stress. Plants (Basel), 10: 1-17. [DOI:10.3390/plants10010037] [PMID] []
62. Rouhi, H.R., Vafaei, M.H., Saman, M. and Shahbodaghloo, A.R. 2021. Study of ascorbic acid priming on germination and biochemical indexes of sheep fescue (Festuca ovina) seeds under drought stress. Iranian Journal of Seed Science and Technology, 10(1): 29-42. [In Persian]
63. Roy, S.K.S., Hamid, A., Giashuddin Miah, M. and Hashem, A. 1996. Seed size variation and its effect on germination and seedling vigour in rice. Journal of Agronomy and Crop Science, 176: 79-82. [DOI:10.1111/j.1439-037X.1996.tb00449.x]
64. Saadat, H. and Sedghi, M. 2023. The effect of priming and aging on the growth indicators and activity of antioxidant enzymes in hybrid maize single cross 704. Iranian Journal of Seed Science and Technology, 12(2): 49-63. [In Persian] [DOI:10.61186/yujs.10.2.49]
65. Sedghi, M., Sheikh Nawazjahid, P. and Seyed Sharifi, R. 2018. The effect of gibberellic acid and pretreatment on germination and some compounds of Stevia (Stevia rebaudiana Bertoni). Plant Process and Function, 7(36): 199-207. [In Persian]
66. Sheikhnavaz Jahed, P., Sedghi, M., Seyed Sharifi, R. and Sofalian, O. 2022. Effect of seed priming on germination and seedling characteristics of aged squash seeds under drought stress. Iranian Journal of Seed Science and Research, 2(9): 31-48. [In Persian]
67. Soltani, M., Moradi, A., Tavakol Afshari, R. and Balouchi, H. 2017. Effect of different storage conditions on germination and some biochemical characteristics of castor bean (Ricinus communis) seed. Iranian Journal of Field Crop Science, 48(1): 91-105. [In Persian]
68. Vurukonda, S. S. K. P., Vardharajula, S., Shrivastava, M. and SkZ, A. 2016. Enhancement of drought stress tolerance in crops by plant growth promoting rhizobacteria. Microbiological Research, 184: 13-24. [DOI:10.1016/j.micres.2015.12.003] [PMID]
69. Wang, B., Yang, R., Ji, Z., Zhang, H., Zheng, W., Zhang, H. and Feng, F. 2022. Evaluation of biochemical and physiological changes in sweet corn seeds under natural aging and artificial accelerated aging. Agronomy, 12: 1028. [DOI:10.3390/agronomy12051028]
70. Zhang, K., Zhang, Y., Sun, J., Meng, J. and Tao, J. 2021. Deterioration of orthodox seeds during ageing: Influencing factors, physiological alterations and the role of reactive oxygen species. Plant Physiology and Biochemistry, 158: 475-485. [DOI:10.1016/j.plaphy.2020.11.031] [PMID]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |