جلد 5، شماره 2 - ( (پاییز و زمستان) 1397 )                   سال1397، جلد5 شماره 2 صفحات 129-137 | برگشت به فهرست نسخه ها

XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Enayati V, Esfandiari E, Pourmohammad A, Haj Mohammadnia Ghalibaf K. Evaluation of Different Methods in Seed Dormancy Breaking and germination of Redroot Pigweed (Amaranthus retroflexus). Iranian J. Seed Res.. 2019; 5 (2) :129-137
URL: http://yujs.yu.ac.ir/jisr/article-1-274-fa.html
عنایتی واقف، اسفندیاری عزت اله، پورمحمد علیرضا، حاج محمدنیا قالی باف کمال. ارزیابی روش‌های مختلف شکستن خواب و جوانه‌زنی بذر علف هرز تاج‌خروس وحشی (Amaranthus retroflexus). پژوهشهای بذر ایران. 1397; 5 (2) :129-137

URL: http://yujs.yu.ac.ir/jisr/article-1-274-fa.html


اداره کل امور عشایر آذربایجان شرقی، سازمان امور عشایر، وزارت جهاد کشاورزی، تبریز ، w.enayati@yahoo.com
چکیده:   (1493 مشاهده)

DOR: 98.1000/2383-1251.1397.5. 129.10.2.1575.41

چکیده مبسوط
مقدمه: علف‌های هرز به‌عنوان مهم‌ترین تنش زیستی، با کاهش کارآیی مصرف آب، هدر رفت مواد غذایی، سایه‌افکنی و ترشح مواد سمی، منجر به کاهش 10 تا 100 درصدی عملکرد گیاهان زراعی می‌شوند. اولین قدم در کنترل علف‌های هرز شناخت زیست‌شناسی و چرخه زندگی علف هرز به‌ویژه خصوصیات اکوفیزیولوژیکی بذر آن‌ها  می‌باشد. خواب در بذر علف‌های هرز از جمله بذرهای تاج‌خروس وحشی امری معمول است؛ بنابراین، با توجه به اهمیت مطالعات خواب و جوانه‌زنی بذر علف هرز، تحقیق حاضر با هدف شناسایی روش‌های شکستن خواب و جوانه‌زنی بذر علف‌ هرز تاج‌خروس وحشی طراحی گردید.
مواد و روش‌ها: پژوهش حاضر در پاییز سال 1392 با جمع‌آوری بذرهای تاج‌خروس وحشی از مزارع روستای آلاجوجه، شهرستان خداآفرین واقع در استان آذربایجان شرقی آغاز، سپس در آزمایشگاه دانشکده کشاورزی دانشگاه مراغه در سال‌های 1393 و 1394 به اجرا درآمد. از تیمارهای آب داغ به مدت‌های 30، 60 و 120 ثانیه، پیش‌سرمای مرطوب (دو درجه سانتی‌گراد) به مدت دو و چهار هفته و نگهداری در دمای شش درجه سانتی‌گراد به مدت 18 ماه در قالب طرح کاملاً تصادفی و در چهار تکرار برای شکستن خواب بذرها استفاده شد. برای آنالیز داده‌ها از برنامه GenStat نسخه 12.1 و برای مقایسه میانگین‌ها از آزمون دانکن در سطح احتمال 5 درصد استفاده گردید. از اکسل 2013 برای رسم نمودارها استفاده گردید.
یافته‌ها: تجزیه واریانس مشخص نمود که اثر تیمار‌ها بر درصد جوانه‌زنی و سرعت جوانه‌زنی در علف هرز تاج‌خروس وحشی در سطح احتمال 1 درصد و میانگین مدت جوانه‌زنی در سطح احتمال 5 درصد معنی‌دار بود. نتایج حاصل نشان داد که در بین تیمارهای مورد مطالعه، تیمار نگهداری بذرها به مدت 18 ماه در دمای 6 درجه سانتی‌گراد بهترین تأثیر بر شکست خواب بذرهای علف هرز تاج‌خروس وحشی داشت. بطوری که بیشترین درصد جوانه‌زنی (92 درصد)، سرعت جوانه‌زنی (18/29 بذر در روز) و کمترین میانگین مدت جوانه‌زنی (2/4 روز) در تیمار نگهداری بذرها به‌ دست آمد. تیمار پیش‌سرمای مرطوب نیز اثرات معنی‌داری در تحریک جوانه‌زنی داشت. با توجه به اینکه تیمار‌های نگهداری بذر در دمای پایین و پیش‌سرمای مرطوب باعث تسریع در فرایند جوانه‌زنی و افزایش درصد جوانه‌زنی می‌گردد، لذا اطلاع دقیق از آن‌ها  می‌تواند در جهت بررسی، کنترل و جلوگیری از گسترش این علف هـرز مؤثر باشد.
نتیجه‌گیری: به‌طور کلی نتایج حاصل از این پژوهش نشان می‌دهد که در بین تیمارهای مورد مطالعه، نگهداری بذرها به به مدت زمان 18 ماه در دمای شش درجه سانتی‌گراد بهترین روش برای برطرف نمودن خواب بذرهای علف‌ هرز تاج‌خروس وحشی می‌باشد.

جنبه‌های نوآوری:
1- تیمار‌های نگهداری بذر در دمای پایین و پیش‌سرمای مرطوب باعث شکست خواب بذر ‌گردید.
2- تیمار‌ نگهداری بذر در دمای پایین باعث افزایش درصد و سرعت جوانه‌زنی ‌گردید.

متن کامل [PDF 318 kb]   (135 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: سایر موضوعات
دریافت: ۱۳۹۶/۱۱/۲۲ | پذیرش: ۱۳۹۷/۵/۱۶

فهرست منابع
1. Alebrahim, M.T., Rashedmihasel, M.H., Meighani, F., and Baghestani, M.A. 2011. Study of dormancy-breaking and optimum temperature for germination of Russian knapweed (Acroptilon repens L.). Journal of Plant Protection, 24(4): 391-397 [In Persian with English summary].
2. Bewley, J.D. 1997. Seed Germination and Dormancy. The Plant Cell, 9: 1055-1066. [DOI:10.1105/tpc.9.7.1055] [PMID] [PMCID]
3. Bewley, J.D., and Black, M. 1994. Seeds: physiology of development and germination. 2nd ed. Plenum Press, New York. p:445. [DOI:10.1007/978-1-4899-1002-8] [PMID]
4. Brar, G.S., Gomez, J.F., McMichael, B.L., Matches, A.G., and Taylor, H.M. 1991.Germination of twenty forage legumes as influenced by temperature. Agronomy Journal, 83(1): 173-175. [DOI:10.2134/agronj1991.00021962008300010040x]
5. Brodford, K.J. 2002. Applications of hydrothermal time to quantifying and modeling seed germination and dormancy. Weed Science, 50(2): 248-260. [DOI:10.1614/0043-1745(2002)050[0248:AOHTTQ]2.0.CO;2]
6. Esno, H., Solna, H., and Sweden, M. 1996. Proceeding of the international seed testing association. Seed Science and Technology, 12: 92-99.
7. Fang, s., Wang, J., Wei, Z., and Zhu, Z. 2006. Methods to break seed dormancy in Cyclocarya paliurus (Batal). Scientia Horticulturae, 110(3): 305-309. [DOI:10.1016/j.scienta.2006.06.031]
8. Gardarin, A., Dürr, C., and Colbach, N. 2011. Prediction of germination rates of weed species: Relationships between germination speed parameters and species traits. Ecological Modelling, 222(3): 626-636. [DOI:10.1016/j.ecolmodel.2010.10.005]
9. Ghadiri, H., and Niazi, M. 2005. Effects of stratification, scarification, alternating temperature and light on seed dormancy of Rumex dentatus, Amaranthus retroflexus and Chenopodium album. Iranian Journal of Weed Science, 2: 93-109 [In Persian with English summary].
10. Ghassemi-Golezani, K., and Dalil, B. 2011. Germination and Seed Vigor Tests. Publications University of Mashhad. 104 P. [In Persian].
11. Greipsson, S. 2001. Effects of stratification and GA3 on seed germination of a sand establishing grass Leymus arenarius used in reclamation. Seed Science and Technology, 29: 1-10.
12. Harberd, N.P., and Peng, J. 2002. The role of GA-mediated signaling in the control of germination. Weed Science, 5: 376-381.
13. Horak, M.J., and loughin, T. M. 2000. Growth analysis of four Amaranthus species. Weed Science, 48: 347-355. [DOI:10.1614/0043-1745(2000)048[0347:GAOFAS]2.0.CO;2]
14. ISTA.1996. International rules for seed testing. Seed Science and Technology, 13: 299-513.
15. Kepczynski, J., and Sznigir, P. 2013. Response of Amaranthus retroflexus L. seeds to gibberellic acid, ethylene and abscisic acid depending on duration of stratification and burial. Plant Growth Regulation, 70(1):15-26. [DOI:10.1007/s10725-012-9774-3]
16. Long, Y., Tan, D.Y., Baskin, C.C., and Baskin, J.M. 2012. Seed dormancy and germination characteristics of Astragalus arpilobus (Fabaceae, subfamily Papilionoideae), a central Asian desert annual ephemeral. South African Journal of Botany, 83: 68-77. [DOI:10.1016/j.sajb.2012.06.010]
17. Matthews, S., and Khajeh-Hosseini, M. 2006. Mean germination time as an indicator of emergence performance in soil of seed lots of maize (Zea mays L.). Seed Science and Technology, 34(2): 339-347. [DOI:10.15258/sst.2006.34.2.09]
18. McDonald, M.B. 2000. Seed Priming. (Edited. M. Black and J. D. Bewley). Sheffield Academic press, 287-325.
19. Nicoloso, F.T., Garlet, A., and ZancheHi, F. 1997. Effects of scarification methods on dormancy break of seeds and of substrates on germination and on development of grapia (Apuleia leiocarpa). Ciencia–Rural, 27: 419-424. [DOI:10.1590/S0103-84781997000300009]
20. Rafael, A.M., Randall, S.C., Michael, J.H., and John, B.J. 2001. Interference of palmer amaranth in corn. Weed Science, 49(2): 202-208. [DOI:10.1614/0043-1745(2001)049[0202:IOPAIC]2.0.CO;2]
21. Rinko, R., Culebro, N.R., Gutierreza-Micel, F.A., and Dendoveen, L. 2003. Scarification of seeds of Accasia angustissima and its effect on germination. Seed Science and Technology, 31(2): 301-307. [DOI:10.15258/sst.2003.31.2.07]
22. Slater, R.J., and Bryant, J.A. 1982. RNA Metabolism during breakage of seed dormancy by low temperature treatment of fruits of Acer platanoides. Annals of Botany, 50: 141-149. [DOI:10.1093/oxfordjournals.aob.a086351]
23. Sozzi, G., and Chiesa, A. 1995. Improvement of caper (Capparis spinosa L.) seed germination by breaking seed coat induced dormancy. Scientia Horticulturae, 62: 255-261. [DOI:10.1016/0304-4238(95)00779-S]
24. Wakjira, K., and Negash, L. 2013. Germination responses of Croton macrostachyus (Euphorbiaceae) to various physico-chemical pre-treatment conditions. South African Journal of Botany, 87: 76-83. [DOI:10.1016/j.sajb.2013.03.012]
25. Zeng-Xing, S., Parrish, D.J., Wolf, D.D., and Welbaum, G. 2001. Stratification in switch grass seeds is reversed and hastened by drying. Crop Science, 41(5): 1546-1551. [DOI:10.2135/cropsci2001.4151546x]
26. Zhou, J., Deckard, E.L., and Ahrens, W.H. 2005. Factors affecting germination of hairy nightshade (Solanum sarrachoides) seeds. Weed Science, 53: 41-45. https://doi.org/10.1614/WS-04-168R2.1 [DOI:10.1614/WS-04-100R1]
27. Zulkaliph, N.A., Juraimi, A.SH., Uddin, MD.K., Begum, M., Mustapha, M.S., Amrizal, S.M., and Samsuddin, N.H. 2011. Use of saline water for weed control in seashore Paspalum (Paspalum vaginatum). Australian Journal of Crop Science, 5: 523-530.

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA code

ارسال پیام به نویسنده مسئول


کلیه حقوق این وب سایت متعلق به مجله پژوهشهای بذر ایران می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2019 All Rights Reserved | Iranian Journal of Seed Research

Designed & Developed by : Yektaweb

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.